Genotyping of giardia lamblia and its relationship to clinical sign in patients with giardiasis in Ilam Province ژنوتیپینگ ژیاردیا لامبلیا و ارتباط آن با علایم بالینی در بیماران مبتلا به ژیاردیازیس در استان ایلام 2 1 ژیاردیا لامبلیا یکی از شایعترین تک یاخته های انگلی روده ای انسان با انتشاری جهانی است، به طوریکه شیوع جهانی آن از 20 تا 60 درصد و بروز آن در کشورهای صنعتی از2 تا 7 درصد و در ایران از 5 تا 23 درصد تخمین زده می شود. این انگل تک یاخته ای می تواند در انسان طیف بالینی گسترده ای از عفونت ها، از عفونت های بدون علامت تا اسهال شدید و یا سندرمی از اسهال مزمن، کاهش وزن و سوء جذب را ایجاد کند. شواهد موجود نشان می دهد اگر چه ممکن است اعضای مجموعه گونه ای ژیاردیا دئودنالیس از نظر ریخت شناسی با یکدیگر تفاوت اندکی داشته باشند اما براساس ویژگی های ژنتیکی می توان اعضای این گونه را از A تا G حداقل به هفت جمعیت ژنتیکی یا ژنوتیپ تقسیم نمود. بررسی های مولکولی انجام شده بر روی ژن های مختلفی از قبیل گلوتامات دهیدروژناز، RNA ریبوزومی و تریوزفسفات ایزومراز، بتا ژیاردین، در انسان و حیوانات نشان داده اند که از بین ژنوتیپ های مختلف این انگل عمدتا دو ژنوتیپ A و B در ایجاد عفونت های انسانی دخالت دارند. اما این که آیا نشانه های بالینی از قبیل اسهال با ژنوتیپ خاصی ارتباط دارند موضوعی است که تاکنون مورد بررسی چندانی قرار نگرفته و در این زمینه نتایج برخی مطالعات انجام شده در مناطق مختلف با یکدیگر متفاوت و گاه متناقص است. بر این اساس تصور گردید که احتمالاً الگوی انتشار ژنوتیپ های انگل و تأثیر آن بر علائم عفونت در مناطق مختلف جغرافیایی با یکدیگر متفاوت باشد. از سوی دیگر به رغم کاهش چشمگیر شیوع عفونت های انگلی هنوز هم ژیاردیازیس از شایع ترین علل بیماری های اسهالی در ایران محسوب می شود. بنابراین مطالعه توصیفی – تحلیلی حاضر با هدف تعیین ژنوتیپ های مختلف ژیاردیا دئودنالیس در مبتلایان به ژیاردیازیس همراه و بدون اسهال مزمن در شهرستان ایلام و مطالعه ارتباط ژنوتیپ های موجود با اسهال مزمن به عنوان یکی از شایع ترین پیامدهای ژیاردیازیس در مقایسه با مبتلایان بدون اسهال مزمن انجام خواهد گرفت. 2 Giardia lamblia has proved to be the most common intestinal protozoan parasite in humans that causes giardiasis. Given the high mutations in the genome of this parasite, the present study was conducted to determine the prevalence of Giardia lamblia subtypes and their relationship with clinical symptoms in patients who appear to have giardiasis. In 69 stool specimens with an appropriate number of giardia cysts, the DNA was first purified, and the genotype was then determined based on the glutamate dehydrogenase (gdh) gene sequence using PCR-RFLP. Data were collected on the clinical symptoms of the patients through a questionnaire, and their relationship with molecular results was studied. Four samples (5.8%) were found to be of subtype AI, 51 (73.9%) of subtype AII and 14 (20.3 %) of subtype BIII. No BIV subtype was found in the present study. A correlation was observed between Giardia lamblia genotypes (AI, AII and BIII) and abdominal pain. All of the people 11/30/22, 3:08 PM Giardia Lamblia Subtypes and Their Relationship with Clinical Symptoms in Patients with Giardiasis - PubMed https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30868967/ 2/2 (100%) who had the AI genotype (i.e. the zoonosis subtype) had been losing weight. There was a significant correlation between weight loss and the AI subtype. All of the people (100%) infected with the BIII genotype experienced diarrhea, and this genotype was found to be associated with diarrhea. The present study found abdominal pain to be the most common symptom of giardiasis in Ilam province. Moreover, humans were found to be the main reservoir for giardia lamblia, although zoonosis subtypes such as AI and BIII still exist in the region and pose a risk for a giardiasis epidemic. 0 0 2013/04/30 1392/2/10 2013/07/10 1392/4/19 جهانگیر عبدی Jahangir Abdi مرکز تحقیقات میکروب شناسی بالینی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران jahangirabdi@yahoo.com giardia genotyping Iran ژیاردیا ایران ژنوتایپینگ ## ##

Title: Genotyping of Fasciola spp Isolated from Domestic Animals Using PCR-RFLP Method in Western Iran تعیین ژنوتایپ گونه های فاسیولا جدا شده از حیوانات اهلی در غرب ایران با استفاده از روش PCR-RFLP 2 1 فاسیولیازیس که عامل آن انگل فاسیولا هپاتیکا و ژیگانتیکا میباشد بیماری مشترک بین انسان و حیوانات است. طبق آمارهای معتبر حدود 17 میلیون نفر در دنیا به این انگل آلوده بوده و سالیانه خسارات جبران ناپذیری را به مراکز دام پروری و بهداشتی وارد میکند. تشخیص رایج این دو گونه بر مبنای خصوصیات مورفولوژیک کرم بالغ و تخم انجام میگیرد. با توجه به تاریخچه طولانی فاسیولازیس در ایران و بروز دو اپیدمی بزرگ آن در استان گیلان (رشت و بندر انزلی) نیاز به یک روش آسان، سریع و قابل اعتماد برای تفکیک گونههای انگل فاسیولا جهت تفکیک هر چه دقیق تر این دو انگل و تعین ژنوتایپینگ وتوالی آنها جهت بررسی تفاوتهای احتمالی زیر گونهای وآنگاه درک بهتر پاتولوژی و اپیدمیولوژی آنها ضروری به نظر میرسد. هدف: تفکیک گونهها و زیر گونههای انگل به خصوص در کشورهایی که گسترش انگل روی هم افتادگی (Overlap)دارد مانند ایران، مصر، پاکستان و کشورهای آسیای جنوب شرقی مشکلات فراوانی را ایجاد کرده است و در موارد بسیاری محقق مجبور به حذف نمونهای است که با زحمت فراوان تهیه کرده است. تفکیک گونههای فاسیولا هپاتیکا از فاسیولا ژیگانتیکا و گونههای حد واسط (Intermediate) با استفاده از روشهای مولکولی ساده تر و معتبرتر است. تکنیک های مختلف مرفومتریک و ژنوتایپیک در سالهای اخیر برای تمایز گونه و زیر گونههای فاسیولا کاربرد فراوان داشته است. از طرفی توالی نوکلوتید های تعیین شده در منطقه مزبور و میزبان های قید شده را میتوان با توالی های قید شده در سایر نواحی مقایسه نمود و نهایتا پلی مرفیسم انگل را در مناطق مختلف و میزبان های مختلف بررسی کرد. 2 Objectives: The most common parasites responsible for fascioliasis are F. hepatica and F. gigantica. Fascioliasis is an important problem in terms of health and economics. The western part of Iran is one of the major hubs of animal husbandry and the prevalence of fascioliasis is high. The aim of Abstract  References  Citations  Supplementary Data  Genotyping of Fasciola hepatica Isolated from Domestic Animals in the West of Iran ADD TO CART BUY NOW Buy Article: $68.00 + tax (Refund Policy) 2 11/30/22, 3:06 PM Genotyping of Fasciola hepatica Isolated from Domestic Animals in...: Ingenta Connect https://www.ingentaconnect.com/content/ben/iddt/2019/00000019/00000004/art00011 2/2 the current study was to determine the Fasciola spp. present in the western part of Iran. In the present study, 45 samples were collected from slaughterhouses in three provinces in the western part of Iran, including Ilam, Lorestan and Kermanshah. Methods: The flukes were detected using morphological methods and the DNA of all samples was extracted. The ribosomal internal transcribed spacer (ITS1) was identified by PCR and PCR-RFLP techniques using the Rsa1 restriction enzyme. Then, 15% of the samples were sequenced. Results: Based on their ITS1 sequence, all samples showed 700 bp bands. The results of sequencing showed a similarity of 99% to 100% across samples. Using the Rsa1 restriction enzyme, all samples produced three distinct bands (60 bp, 100 bp, and 360 bp). These results demonstrated that the most common fasciola in the western part of Iran in sheep and cattle is F. hepatica. Conclusion: The results of the present study showed that only the species F. hepatica is parasitizing livestock in the western part of Iran. Further studies using new molecular markers for more accurate identification of fasciola-causing species will be useful in the control and prevention of fascioliasis. 0 0 2013/04/302013/05/20 1392/2/30 2013/07/102013/07/10 1392/4/19 جهانگیر عبدی Jahangir Abdi مرکز تحقیقات میکروب شناسی بالینی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران jahangirabdi@yahoo.com Fasciola genotyping Iran فاسیولا ایران ژنوتایپینگ ## ##

Comparison Polymorphism (5HTTLPR) SLC6A4 Gene In normal People and patients With severe Depression In Ilam State مقایسه ی پلی مرفیسم 5HTTLPRژن SLC6A4 در افراد سالم و افراد با افسردگی شدید در استان ایلام. 2 1 خودکشی وافسردگی یک مشکل عمومی وفراگیردربین مردم است.درسطح جهان ازهر100000 مرگ 16 مرگ براثرخودکشی می میرند.این آماردرمناطق جنوبی جهان بیشتردیده می شودهمچنین تخمین زده شده است که آمارکسانی که اقدام برای خودکشی می کنند40-10درصدبیشترازکسانی می باشندکه خودکشی می کنند(1). شواهدنشان می دهدکه شخصیت ورفتارانسانی بادگرگونی درترکیبات مونوآمینی بخصوص سروتونین درارتباط است(2,3) سروتونین یک نقش کلیدی به عنوان یک Neurotransmitter درسیستم عصبی داردکه بسیاری از رفتارهای روانی و اعمال فیزیکی انسان را کنترل می‌کند (خواب, میل جنسی, ...). در هنگام دریافت سیگنال توسط نورون, سروتونین ذخیره شده در وزیکولها به فضای سیناپسی آزاد می‌شود (input) در مرحله‌ی بعد، سروتونین موجود در فضای سیناپسی از طریق مولکول انتقال دهنده سروتونین به گیرنده‌های نورون بعدی(postsynaptic neuron) متصل و آنها را تحریک می‌کند (output) (4). ژن انتقال دهنده سروتونین SLC6A4)) یک پروتئین اینتگرال غشایی را کد می‌کند که نقش انتقال سروتونین رادرفضای سیناپس‌ها بر عهده دارد(5,6). مولکول انتقال دهنده سروتونین در فرایند اثر این ماده حیاتی بسیار تاثیر گذار است و چنانچه غلظت این ماده کم باشد سروتونین در فضای سیناپسی منتقل نشده و در آنجا انباشته می شود و چنانچه مقدار این مولکول زیاد باشد سروتونین با سرعت بیشتری انتقال میابد و این باعث می شود انتقال سروتونین ناپایدار باشد و اثربخشی کمتری داشته باشد. 2 Suicide and depression is a general and widespread problem among people. Worldwide, 16 deaths out of every 100,000 deaths are due to suicide. This statistic is more common in the southern regions of the world. It has also been estimated that the number of people who commit suicide is 10-40% more than those who commit suicide (1). The evidence shows that the personality and human behavior of Badgorgon is related to monoamine compounds, especially serotonin (2,3). Serotonin plays a key role as a neurotransmitter in the nervous system that controls many mental behaviors and physical actions of humans (sleep, sexual desire,...). When the neuron receives the signal, the serotonin stored in the vesicles is released into the synaptic space (input). In the next step, the serotonin in the synaptic space is connected to the receptors of the next neuron (postsynaptic neuron) and stimulates them. output) (4). Serotonin transporter gene (SLC6A4) encodes an integral membrane protein that is responsible for the transport of serotonin across synapses (5,6). The serotonin transporter molecule is very effective in the process of the effect of this vital substance, and if the concentration of this substance is low, serotonin is not transported in the synaptic space and accumulates there, and if the amount of this molecule is high, serotonin is transferred at a faster rate, and this causes Serotonin transmission may be unstable and less effective. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/14 1393/2/24 2013/07/102013/07/102014/08/23 1393/6/1 ستار کیخاونی Sattar Kikhavani مرکز تحقیقات آسیب‌های روانی و اجتماعی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران skaikhavani@yahoo.com فرحناز پویان farahnaz pooyan ایران fpooyan505@gmail.com Depression serotonin 5HTTLPR polymorphism افسردگی سروتونین پلی مرفیسم 5HTTLPR ## ##

: The effect of Education to mothers based on health belief model on decreasing dental plaque index of 3-6 years old children of Ilam city in 2014. بررسی تاثیر آموزش به مادران مبتنی بر مدل اعتقاد بهداشتی بر کاهش پلاک دندانی کودکان 6-3 سال شهر ایلام در سال 1393 2 1 در جوامع امروزی با توجه به افزایش ارتباطات و حضور افراد جامعه در موقعیت های اجتماعی گوناگون، لزوم رعایت بهداشت دهان و دندان و زیبائی دندان ها بیش از گذشته حس می شود، علاوه بر این، با توجه به این که سلامت عمومی بدن با سلامت دهان و دندان رابطه مستقیم دارد، از این رو سلامت دهان و دندان اهمیت ویژه ای در حفظ و ارتقا سلامت افراد جامعه دارد. در کشور ایران در زمینه بهداشت دهان و دندان انگیزه ای قوی تحت عنوان اعتقادات مذهبی نیز وجود دارد. زیرا در اسلام مسئله رعایت بهداشت دهان و دندان نه تنها یک اصل فرهنگی-اجتماعی است، بلکه از مسلمات و ضروریات اعتقادی و دینی نیز می باشد. یکی از عوامل موثر بر از دست دادن دندان ها، پوسیدگی و بیماری های لثه می باشد. مهمترین علت بوجود آورنده این دو بیماری پلاک میکروبی می باشد که به طور طبیعی ایجاد می شود درصورتی که با رعایت بهداشت دهان و دندان می توان به راحتی آن را کنترل نمود. یکی از ضروریات انجام آموزش بهداشت دهان و دندان، شیوع بالای بیماری های دندان و لثه به ویژه در کودکان است. دارا بودن دندان سالم در کودکان جهت جویدن غذا، تکلم، زیبایی، اعتماد به نفس کودک، سلامت دستگاه گوارش و ...بسیار ضروری می باشد. اهمیت تغذیه صحیح به ویژه در کودکان که در حال رشد می باشند، قابل توجه است. 2 : The effect of Education to mothers based on health belief model on decreasing dental plaque index of 3-6 years old children of Ilam city in 2014. : The effect of Education to mothers based on health belief model on decreasing dental plaque index of 3-6 years old: The effect of Education to mothers based on health belief model on decreasing dental plaque index of 3-6 years old children of Ilam city in 2014. : The effect of Education to mothers based on health belief model on decreasing dental plaque index of 3-6 years old children of Ilam city in 2014. : The effect of Education to mothers based on health belief model on decreasing dental plaque index of 3-6 years old children of Ilam city in 2014. children of Ilam city in 2014. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/15 1394/2/25 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/11 1394/4/20 زینب غضنفری Zeinab Ghazanfari مرکز تحقیقات آسیب‌های روانی و اجتماعی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران zghazanfari2006@yahoo.com مریم اسماعیلی کیا maryam esmaili ایران esmaili66leila@gmail.com امین میرزایی Amin Mirzaei گروه آموزشی بهداشت عمومی و آموزش بهداشت، دانشکده بهداشت، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران mirzaei.amin62@gmail.com کورش سایه میری Kourosh Sayehmiri مرکز تحقیقات آسیب‌های روانی و اجتماعی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران sayehmiri-k@medilam.ac.ir اسکندر غلامی پریزاد Eskandar Gholamiparizad دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران eskandar_parizad@yahoo.com محمد صادق عابدزاده زواره Mohamad Sadegh Abedzadeh Zavareh گروه آموزشی بهداشت عمومی و آموزش بهداشت، دانشکده بهداشت، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران msabed348@gmail.com : The effect of Education to mothers based on health belief model on decreasing dental plaque index of 3-6 years old children of Ilam city in 2014. بررسی تاثیر آموزش به مادران مبتنی بر مدل اعتقاد بهداشتی بر کاهش پلاک دندانی کودکان 6-3 سال شهر ایلام در سال 1393 ## ##

Assessing the effect of education based on Theory of Planned Behavior (TPB) on delivery type selection in pregnant women referring to Kermanshah health centers at 1393. بررسی تاثیر آموزش مبتنی بر تئوری رفتار برنامه ریزی شده در انتخاب روش زایمان زنان باردار مراجعه کننده به مراکز بهداشتی درمانی شهر کرمانشاه در سال 1393 2 1 حاملگی یک پدیده فیزیولوژیک است و پایان آن یعنی زایمان حادثه ای است که با ترس، نگرانی و حتی وحشت از مرگ همراه می باشد. زایمان یک تجربه ی بحرانی در دوره زندگی زنان به حساب می آید (1). اما یکی از نگرانیهای جامعه در زمینه زایمان، انجام سزارین می باشد (2). اگرچه سزارین در قرن گذشته نقش مهمی در کاهش مرگ و میر و عوارض ناشی از زایمان در مادر و جنین داشته است ولی مسئله نگران کننده در مامایی مدرن میزان بالای سزارین می باشد که هر روزه انجام می شود (3). زایمان طبیعی ایمن ترین و کم عارضه ترین روش زایمان در اکثریت موارد هم برای مادر و هم برای نوزاد می باشد. لذا اقدام به سزارین های غیر ضروری سبب افزایش مرگ و میر و عوارض در مادران و نوزادان و همچنین تحمیل هزینه های اقتصادی بر دوش جامعه خواهد بود (5،4). طبق گزارش سازمان جهانی بهداشت آمار سزارین باید 5 تا 15 درصد کل زایمانها باشد (4). نظام پایش و ارزشیابی خدمات باروری وزارت بهداشت، درمان و آموزش پزشکی در سال 1389 میزان سزارین را 48 درصد کل کشور اعلام کرده است و این آمار بر اساس اطلاعات ثبت شده در بیمارستانهای دانشگاهی بود و آمار مربوط به بیمارستانهای خصوصی بالای 90 درصد کل زایمانها و حتی در برخی بیمارستانها 100 درصد گزارش شده است (7). عوامل متعددی در افزایش میزان سزارین دخالت می کنند که نوع انتخاب مادر، سن بالای مادر، سابقه سزارین قبلی، حاملگی چند قلویی، قابل کنترل نبودن رویدادهای تولد، ترس از درد، زایمان نوزاد مرده و پارگی رحم، از عوامل اصلی این افزایش می باشند از دیگر دلایل افزایش زایمان سزارین، نگرش منفی زنان نسبت به تجربیات زایمان طبیعی قبلی شان، نگرانی و افسردگی، خاطرات ناخوشایند دوران کودکی شان و شرایط سخت اجتماعی و اقتصادی آنان می باشد (10،9). بر اساس مطالعات انجام گرفته در ایران یکی از دلایل عمده سزارین اصرار خود مادر به دلیل ترس از درد زایمان می باشد (15،14). آموزش بهداشت سبب ارتقاء آگاهی های مادر طی دوران بارداری می شود تا با آگاهی کامل روش مناسبی را برای زایمان خود انتخاب کرده و بدون علل بالینی سزارین را انتخاب نکند (6). ارزش برنامه های آموزش بهداشت به میزان اثر بخشی این برنامه ها بستگی دارد و اثر بخشی برنامه های آموزش بهداشت به مقدار زیادی بستگی به استفاده صحیح از تئوری ها و مدل های مورد استفاده در آموزش بهداشت دارد (22). با توجه به اینکه الگوهای مطالعه رفتار می تواند در بررسی دیدگاه های مردم نسبت به رفتار بهداشتی حایز اهمیت باشند، از تئوری رفتار برنامه ریزی شده در تحقیق حاضر استفاده خواهد شد. 2 Assessing the effect of education based on Theory of Planned Behavior (TPB) on delivery type selection in pregnant women referring to Kermanshah health centers at 1393.Assessing the effect of education based on Theory of Planned Behavior (TPB) on delivery type selection in pregnant women referring to Kermanshah health centers at 1393.Assessing the effect of education based on Theory of Planned Behavior (TPB) on delivery type selection in pregnant women referring to Kermanshah health centers at 1393.Assessing the effect of education based on Theory of Planned Behavior (TPB) on delivery type selection in pregnant women referring to Kermanshah health centers at 1393.Assessing the effect of education based on Theory of Planned Behavior (TPB) on delivery type selection in pregnant women referring to Kermanshah health centers at 1393.Assessing the effect of education based on Theory of Planned Behavior (TPB) on delivery type selection in pregnant women referring to Kermanshah health centers at 1393.Assessing the effect of education based on Theory of Planned Behavior (TPB) on delivery type selection in pregnant women referring to Kermanshah health centers at 1393.Assessing the effect of education based on Theory of Planned Behavior (TPB) on delivery type selection in pregnant women referring to Kermanshah health centers at 1393. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/15 1394/2/25 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/16 1394/6/25 زینب غضنفری Zeinab Ghazanfari مرکز تحقیقات آسیب‌های روانی و اجتماعی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران zghazanfari2006@yahoo.com بهاره سهیلی bahare sohili ایران bahareh.soheili@gmail.com Assessing the effect of education based on Theory of Planned Behavior (TPB) on delivery type selection in pregnant women referring to Kermanshah health centers at 1393. مبتنی بر تئوریو رفتار برنامه ریزی و شده در انتخاب روش ز ## ##

Evaluation the status of patients with respiratory infections and preventive interventions taking antibiotics in these patients. بررسی وضعیت بیماران عفونت تنفسی و مداخلات پیشگیری کننده از مصرف آنتی بیوتیک در این بیماران 2 1 استفاده بیش از حد و تجویز نامناسب آنتی بیوتیک برای عفونت های حاد دستگاه تنفسی ARIs )کی از عوامل اصلی مشکلات فعلی مقاومت آنتی بیوتیکی است. همچنین، ARIs جزء شایع ترین عفونت ها هستند که نظر به انتشار بسیار گسترده، از اهمیت بالایی برخوردار هستند و می توانند منجر به مرگ و میر کودکان و بزرگسالان گردد. لذا هدف از این مطالعه، آموزش مهارت های ارتباطی پزشک با بیماران جهت کاهش مصرف آنتی بیوتیک، کاهش مقامت آنتی بیوتیکی، استفاده مناسب از آنتی بیوتیک ها در مواردی که مصرف آن ضروری است، کاهش خود درمانی و در نهایت کاهش هزینه ها است. 2 Overuse and inappropriate antibiotic prescription for acute respiratory infections (ARIs) are one of the major contributors to the current antibiotic resistance problem. Also, ARIs are one of the most common infections so that, they are of great importance and can play a very important role in mortality in children and adults due to their very widespread and rapid spread. So, the purpose of this study is to train physician communication skills with patients in order to reduce use of antibiotic and subsequently reduce antibiotic resistance, proper use of antibiotics in cases where it is necessary to use, reduce self-medication and ultimately reduce costs. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/14 1396/2/24 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/16 1396/7/24 حسن ولدبیگی hassan valadbegi مرکز تحقیقات میکروب شناسی بالینی ایران hasan.valadbeigi@gmail.com نورخدا صادقی فرد Nourkhoda Sadeghifard مرکز تحقیقات میکروب شناسی بالینی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران sadeghifard@gmail.com سبحان غفوریان Sobhan Ghafourian مرکز تحقیقات میکروب شناسی بالینی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران sobhan.ghafurian@gmail.com جاسم محمدی Jasem Mohamadi گروه آموزشی کودکان، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران sartazen_1961@yahoo.com علی نظری Ali Nazari گروه آموزشی بیماری‌های عفونی و طب گرمسیری، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران dralinazari@yahoo.com رضا پاکزاد Reza Pakzad دانشکده بهداشت، ایران rezapakzad2010@yahoo.com Prescribing antibiotics Respiratory Infection Intervention Physician prescription تجویز آنتی بیوتیک عفونت تنفسی مداخله نسخ پزشکان References##1. Goossens H, Ferech M, Vander Stichele R, Elseviers M, Group EP. Outpatient antibiotic use in Europe and association with resistance: a cross-national database study. The Lancet. 2005;365(9459):579-87.##2. Little P, Moore M, Kelly J, Williamson I, Leydon G, McDermott L, et al. Delayed antibiotic prescribing strategies for respiratory tract infections in primary care: pragmatic, factorial, randomised controlled trial. Bmj. 2014;348.##3. Spurling GK, Del Mar CB, Dooley L, Clark J, Askew DA. Delayed antibiotic prescriptions for respiratory infections. Cochrane Database of Systematic Reviews. 2017(9).##4. Nazari Z, Tabarraei E, Akbarmehr J. Molecular Epidemiology of Adenoviruses among Respiratory Infected Patients. Medical Laboratory Journal. 2014;8(1):1-6.##5. Murarkar S, Gothankar J, Doke P, Dhumale G, Pore PD, Lalwani S, et al. Prevalence of the acute respiratory infections and associated factors in the rural areas and urban slum areas of western Maharashtra, India: a community-based cross-sectional study. Frontiers in public health. 2021;9.##6. Al-Tawfiq JA, Zumla A, Gautret P, Gray GC, Hui DS, Al-Rabeeah AA, et al. Surveillance for emerging respiratory viruses. The Lancet Infectious Diseases. 2014;14(10):992-1000.##7. Zumla A, Memish ZA, Maeurer M, Bates M, Mwaba P, Al-Tawfiq JA, et al. Emerging novel and antimicrobial-resistant respiratory tract infections: new drug development and therapeutic options. The Lancet Infectious Diseases. 2014;14(11):1136-49.##8. Di Mario S, Gagliotti C, Buttazzi R, Marchetti F, Dodi I, Barbieri L, et al. Reducing antibiotic prescriptions in children is not associated with higher rate of complications. European Journal of Pediatrics. 2021;180(4):1185-92.##9. Hussain A, AARØ LE, KVÅLE G. Impact of a health education program to promote consumption of vitamin A rich foods in Bangladesh. Health Promotion International. 1997:103-9.##10. Tembo KC. Grass-root health education strategies in Malawi. Journal of the Royal Society of Health. 1995;115(5):318-9.##11. Piltcher OB, Kosugi EM, Sakano E, Mion O, Testa JRG, Romano FR, et al. How to avoid the inappropriate use of antibiotics in upper respiratory tract infections? A position statement from an expert panel. Brazilian journal of otorhinolaryngology. 2018;84:265-79.##12. Group NGD. Prescribing of antibiotics for self-limiting respiratory tract infections in adults and children in primary care. URL: www nice org uk/Guidance/CG69 (accessed July 2008). 2008.##13. Bennett J, Dolin R, Blaser M. Principles and practice of infectious diseases, vol 1 Elsevier Health Sciences. Philadelphia, PA[Google Scholar]. 2014.##14. Black RE, Cousens S, Johnson HL, Lawn JE, Rudan I, Bassani DG, et al. Global, regional, and national causes of child mortality in 2008: a systematic analysis. The lancet. 2010;375(9730):1969-87.##15. Abd-Jamil J, Teoh B-T, Hassan EH, Roslan N, AbuBakar S. Molecular identification of adenovirus causing respiratory tract infection in pediatric patients at the University of Malaya Medical Center. BMC pediatrics. 2010;10(1):1-7.##16. Rautakorpi U-M, Huikko S, Honkanen P, Klaukka T, Mäkelä M, Palva E, et al. The Antimicrobial Treatment Strategies (MIKSTRA) program: a 5-year follow-up of infection-specific antibiotic use in primary health care and the effect of implementation of treatment guidelines. Clinical infectious diseases. 2006;42(9):1221-30.##17. Aoybamroong N, Kantamalee W, Thadanipon K, Techasaensiri C, Malathum K, Apiwattanakul N. Impact of an antibiotic stewardship program on antibiotic prescription for acute respiratory tract infections in children: A prospective before-after study. Clinical pediatrics. 2019;58(11-12):1166-74.##18. van der Velden AW, Kuyvenhoven MM, Verheij TJ. Improving antibiotic prescribing quality by an intervention embedded in the primary care practice accreditation: the ARTI4 randomized trial. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2016;71(1):257-63.##19. Oliveira I, Rego C, Semedo G, Gomes D, Figueiras A, Roque F, et al. Systematic review on the impact of guidelines adherence on antibiotic prescription in respiratory infections. Antibiotics. 2020;9(9):546.##20. Yoon YK, Park C-S, Kim JW, Hwang K, Lee SY, Kim TH, et al. Guidelines for the antibiotic use in adults with acute upper respiratory tract infections. Infection & chemotherapy. 2017;49(4):326-52.##21. Wong DM, Blumberg DA, Lowe LG. Guidelines for the use of antibiotics in acute upper respiratory infections. American family physician. 2006;74(6):956-66.##22. Esfahani BN, Basiri R, Mirhosseini SMM, Moghim S, Dolatkhah S. Nosocomial infections in intensive care unit: pattern of antibiotic-resistance in Iranian community. Advanced Biomedical Research. 2017;6.##. ##

Effects of education on knowledge, attitude and responsible environmental behavior of elementary school girls city of ilam in 1395 بررسی تاثیر آموزش بر ارتقاء رفتارهای مسئولانه زیست‌محیطی دانش آموزان دختر متوسطه اول شهر ایلام در سال 1395 2 1 زمینه و هدف: آگاهی زیست‌محیطی و شناخت مسائل محیط‌ زیست، متغیر تأثیرگذار بر رفتارهای زیست‌محیطی است و برای اصلاح کنش انسانی، ضروری است که جامعه آموزش ببیند. هدف از این مطالعه تعیین تأثیر آموزش بر ارتقاء رفتارهای مسئولانه زیست‌محیطی دانش آموزان دختر متوسطه اول شهر ایلام در سال 1395 بود. مواد و روش کار: این مطالعه یک مطالعه تجربی است که در سال 1395 بر روی دانش آموزان دختر مدارس متوسطه اول شهر ایلام انجام شد. ابزار جمع‌آوری داده‌ها یک پرسشنامه محقق ساخته بود. دو مدرسه متوسطه دخترانه به‌ صورت تصادفی از بین مدارس متوسطه اول دولتی شهر ایلام انتخاب و به ‌طور تصادفی به گروه‌های آزمون (165 نفر) و کنترل (165 نفر) اختصاص داده شدند. مداخله آموزشی در 5 جلسه 30 دقیقه‌ای (شامل مفاهیم زیست‌محیطی، تولید زباله و بازیافت آن، آلودگی هوا و آب، صرفه جویی در مصرف آب و انرژی، فاضلاب و روش‌های دفع آن) برای گروه آزمون طراحی و اجرا شد. یک ماه پس از مداخله، دانش آموزان هر دو گروه مجدداً مورد بررسی قرار گرفتند. داده‌ها با استفاده از نرم‌افزار SPSS نسخه 19 با کمک آزمون تی مستقل، تی زوجی، کای دو، همبستگی و رگرسیون در سطح معنی داری 05/0 تحلیل شدند. یافته‌ها: گروه‌های مداخله و کنترل در ابتدای مطالعه از لحاظ متغیرهای دموگرافیک همسان بودند. با وجود همسان بودن گروه ها از نظر میانگین نمرات دانش، نگرش و رفتار مسئولانه قبل از مداخله (05/0<P)، تفاوت معنی‌داری در میانگین نمرات همه متغیرها بین دو گروه بعد از مداخله مشاهده گردید (05/0P<). نتیجه‌گیری: آموزش جامعه یک راهبرد مؤثر برای بالا بردن دانش زیست‌محیطی افراد، ارتقاء نگرش آنها نسبت به محیط زیست و در نهایت ارتقای رفتارهای مسئولانه زیست‌محیطی در میان دانش آموزان دختر متوسطه اول است. 2 Background: Environmental awareness and understanding of environmental issues are influential variables in environmental behaviors, and it is imperative for the community to educate on human behavior. It is only in the light of this type of training that many resolved environmental crises and sustainable development are realized. The purpose of this study was to determine the effect of education on promoting environmentally responsible behaviors of first grade high school students in Ilam in 2016. Methods: This study was an empirical study that was done on female high school students in Ilam city in 2016. Data collection tool was a researcher-made questionnaire. Two girls' high schools were randomly selected from the first public high schools of Ilam and randomly assigned to the experimental (N= 165) and control (N= 165) groups. Educational intervention was designed and implemented in 5-sessions of 30-minutes including environmental concepts, waste production and recycling, air and water pollution, water and energy saving, sewage and disposal methods for the case group. One month after the intervention, students in both groups were evaluated. Data were analyzed with SPSS software using independent t-test, paired t-test, chi-square, correlation and regression. Results: Despite the similarity of the groups in the mean scores of knowledge, attitude and responsible behavior before intervention (P>0.05), there was a significant difference in the mean scores of all variables between the two groups after the intervention (P<0.05). Conclusion: Community education is an effective strategy to raise environmental information, Developing environmental sensitivity and beliefs and ultimately promoting responsible environmental behaviors among first grade female students. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/142017/08/20 1396/5/29 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/162017/10/24 1396/8/2 مهدیه اسدی mahdieh asadi دانشگاه علوم پزشکی ایلام ایران asadi_eh@yahoo.com حمید تقی نژاد Hamid Taghinejad گروه آموزشی پرستاری، دانشکده پرستاری و مامایی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران hamid2005mordad@yahoo.com : Knowledge Attitude Health Education Responsible Environmental Behavior Secondary School Girl student Ilam کلیدواژه: دانش نگرش آموزش بهداشت رفتار مسئولانه زیست‌محیطی مدرسه متوسطه اول دانش آموز دختر ایلام. 7-Erdogan M. The Effects of Ecology-Based Summer Nature Education Program on Primary School Students' Environmental Knowledge, Environmental Affect and Responsible Environmental Behavior. Educational Sciences: Theory and Practice. 2011;11(4):2233-7.## 8-Blatt EN. An investigation of the goals for an environmental science course: teacher and student perspectives. Environmental Education Research. 2015;21(5):710-33.## 9-Sakellari M, Skanavis C. Environmental behavior and gender: an emerging area of concern for environmental education research. Applied Environmental Education & Communication. 2013;12(2):77-87.## 10-Hsu S-J. The effects of an environmental education program on responsible environmental behavior and associated environmental literacy variables in Taiwanese college students. The Journal of Environmental Education. 2004;35(2):37-48##1-میردامادی م، باقری ورکارنه ع، اسماعیلی س. بررسی میزان آگاهی دانش آموزان دوره متوسطه شهر تهران از حفاظت محیط زیست.##2-محرم نژاد ن، حیدری ع. تدوین الگوی مدیریتی توسعه پایدار آموزش محیط زیست برای نسل جوان کشور. فصلنامه علوم و تکنولوژی محیط زیست. 2007;8(1):68-77.##3-صالحی ص، پازوکی نژاد ز، امامقلی ل. آموزش وپرورش و محیط زیست (نگرش، آگاهی و رفتارهای زیست محیطی دانش ‌آموزان). علوم تربیتی. 2014;20(2):171-90.##4-مختاری‌ ملک‌آبادی ر، عبداللهی ع ا, صادقی ح ر. تحلیل و بازشناسی رفتارهای زیست محیطی شهری (مطالعه موردی: شهر اصفهان، سال 1391). پژوهش و برنامه ریزی شهری. 1393;3(5):1-20.##5جوکار گ، میردامادی م. دیدگاه دانش آموزان دختر دبیرستانهای شهر شیراز نسبت به حفاظت ازمحیط زیست.##6-شرفی ک، رحیمی ش، شعیب، درگاهی، رضیئی، مرادی ش، et al. بررسی نقش آموزش درتغییر آگاهی و نگرش مرتبط با مباحث زیست محیطی در دانش آموزان روستایی پایه اول دبیرستان حومه شهرماهیدشت کرمانشاه در سال1393 . فصلنامه نسیم تندرستی. 2014;2(4):52-9. ##

Effects of instruction on preventive behaviors of head lice infestation among female primary school children at Eyvan city in 2016 بررسی تاثیر آموزش بر رفتارهای پیشگیری کننده از شپش سر در دانش آموزان ابتدایی دختر شهر ایوان در سال تحصیلی 1396-1395 2 1 چکید ه زمینه و هدف: علی رغم پیشرفتهای چشمگیر در آموزش بهداشت و پزشکی ، آلودگی به شپش سر هنوز به عنوان یک معضل بهداشتی در کودکان دبستانی مطرح است. هدف از این مطالعه بررسی تاثیر برنامه آموزش بهداشت بر رفتارهای پیشگیری کننده از آلودگی به شپش سر در بین دانش آموزان دختر مدارس ابتدایی شهر ایوان در سال تحصیلی 96 - 1395 بود . مواد و روش کار: این مطالعه از نوع تجربی بود که د ر سال 1395 بر روی دانش آموزان دختر مدارس ابتدایی شهر ایوان انجا م ش د. ابزار جم ع آو ری دادهها ی ک پرسشنامه محق ق ساخته بود. دو م درسه ابتدایی دختران ه به صور ت تصادف ی ا ز بین مدار س ابتدایی دولتی شهر ایوا ن انتخا ب و ب ه طو ر تصادف ی ب ه گرو ه های آزمو ن ) 95 نف ر( و شاه د ) 62 نفر( اختصا ص داد ه شدند. مداخله آموزش ی ب ر اسا س مدل اعتقاد بهداشت ی د ر 5 جلسه 30 دقیقها ی برای گروه آزمون طراحی و اجرا ش د. یک ماه پس از مداخله، دانش آموزان هر دو گرو ه مجددا مور د بررس ی قرا ر گرفتن د. دادهها با استفاده از نرم افزار SPSS با کم ک آزمو ن تی مستقل ، تی زوجی ، کای دو ، همبستگی و رگرسیون تحلیل شدن د. یافتهها: علی رغم یکسان بودن گروه ها از نظر میانگین نمرات دانش، متغیرها ی HBM و رفتار پیشگیرانه قبل از مداخل ه ) 05 / 0 < P( ، تفاوت معنی داری در میانگین نمرات همه متغیرها بین دو گروه بعد از مداخله مشاهده گردید ) 05 / 0P< . ) نتیجه گیری: استفاده از مدل اعتقاد بهداشتی به عنوان یک راهبرد موث ر برای ارتقا ی رفتارهای پیشگیری کننده ا ز پدیکولو ز د ر میا ن دانش آموزان دختر ابتدایی توصیه می گردد . 2 Abstract Background: Despite advances in health and medical education, head lice infestation as a common public health problem that is most prevalent in primary school children. The aim of this study was to evaluate the effect of health education program on preventive behaviors of head lice infestation among primary school girls at Eyvan city in 2016. Methods: This study was an experimental study which was conducted in 2016 on girl primary school students in Eyvan, Ilam, Iran. Data collection tools were a researcher-made questionnaire. Two girl primary schools were randomly selected from public primary schools and randomly allocated to case (N=95) group and control (N=62) group. Educational intervention was designed based health belief model in 5-sessions 30-mintues for the case group. One month after the intervention, the students in both groups were evaluated. Data was analyzed with SPSS vita independent t-test, pair t-test, X2, correlation and regression. Results: The two groups had no significant differences in the scores of knowledge, HBM constructs and preventive behavior before the intervention. But, after the intervention, the mean scores of all parameters significantly improved in the case group. Conclusion: Applying HBM can be an effective strategy to promote preventive behaviors against pediculosis among girl primary school students. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/142017/08/202017/10/7 1396/7/15 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/162017/10/242017/10/24 1396/8/2 زینب غضنفری Zeinab Ghazanfari مرکز تحقیقات آسیب‌های روانی و اجتماعی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران zghazanfari2006@yahoo.com سمیرا دانشور Samira Daneshvar علوم پزشکی ایران samiradaneshvar_@medilam.ac.ir علی اشرف عیوضی Ali-Ashraf Aivazi گروه آموزشی بهداشت عمومی و آموزش بهداشت، دانشکده بهداشت، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران ali.medilam@gmail.com Keywords: head lice health education preventive behaviors primary school کلید واژ ه: شپش سر آموزش بهداشت رفتار پیشگیرانه دانش آموزان دختر مدارس ابتدایی Reference##1. Davari B, Kolivand M, Poomohammadi A, Faramarzi Gohar A, Feizei F, Rafat Bakhsh S, et al. An epidemiological study of Pediculus capitis in students of Pakdasht county, in autumn of 2013. Pajouhan. 2015;14(1):57-63.##2. Modaresi M, Mansouri Ghiasi AN, Modaresi M, Marefat A. The prevalence of head lice infestation among primary school children in Tonekabon, Iran. Iran J Infect Dis Trop Med. 2013;18(60):41-5.##3. Zareban E, AbbaszadeBezi M, Movadi M, Mehrjoofard H, Ghafari H. Evaluation of health education program for reducing head lice infestation among primary school girls. J Birjand Univ Med Sci. 2006;13(1):25-32.##4. Motevalli Haghi S, Rafinejad J, Hosseni M. Epidemiology of Pediculosis and its associated risk factors in primary-school children of Sari, Mazandaran province, in 2012-2013. Journal of Health. 2014;4(4):339-48.##5. Noori A, Ghorban Pour M, Adib M, Noori AV, Niazi S. Head lice infestation (Pediculosis) and its associated factors in the rural school students of Kalaleh, in the academic year 1392-93. Hakim. 2014;2(1):60-56.##6. Gholamnia Shirvani Z, Shokravi A, Ardestani M. Effect of designed health education program on knowledge, attitude, practice and the rate Pediculosis capitis in female primary school students in Chabahar city. J Shahrekord Univ Med Sci. 2011;13(3):25-35.##7. Manrique-Saide P, Pavía-Ruz N, Rodríguez-Buenfil JC, Herrera Herrera R, Gómez-Ruiz P, Pilger D. Prevalence of Pediculosis capitis in children from a rural school in Yucatan, Mexico. Revista do Instituto de Medicina Tropical de Sao Paulo. 2011;53(6):325-7.##8. Rassami W, Soonwera M. Epidemiology of Pediculosis capitis among school children in the eastern area of Bangkok, Thailand. Asian Pacific journal of tropical biomedicine. 2012;2(11):901.##9. Bartosik K, Buczek A, Zajac Z, Kulisz J. Head Pediculosis in school children in the eastern region of the European :union:. Ann Agric Environ Med. 2015;22(4):599-603.##10. Birkemoe T, Lindstedt HH, Ottesen P, Soleng A, Næss O, Rukke BA. Head lice predictors and infestation dynamics among primary school children in Norway. Fam Pract. 2015;33(1):23-9.##11. Saghafipour A, Akbari A, Norouzi M, Khajat P. The epidemiology of pediculus is humanus capitis infestation and effective factors in elementary schools of Qom Province Girls 2010, Qom, Iran. Qom Univ Med Sci J. 2012;6(3):46-51.##12. Noroozi M, Saghafipour A, Akbari A, Khajat P, Khadem Maboodi AA. The prevalence of Pediculosis capitis and its associated risk factors in primary schools of girls in rural district. J Shahrekord Univ Med Sci. 2013;15(2):43-52.##13. Kabiri H, Dastgiri S, Alizadeh M. The Prevalence of head lice (pediculus humanus capitis) and its associated risk factors in Bonab county during 2013-2014. Depiction of Health. 2015;6(1):31-6.##14. Moosazadeh M, Afshari M, Keianian H, Nezammahalleh A, Enayati AA. Prevalence of head lice infestation and its associated factors among primary school students in Iran: A systematic review and meta-analysis. Onsog public health Res Persepct. 2015;6(6):346-56.##15. Doroodgar A, Sadr F, Sayyah M, Doroodgar M, Tashakkor Z, Doroodgar M. Prevalence and associated factors of head lice infestation among primary schoolchildren in city of Aran and Bidgol (Esfahan Province, Iran), 2008. Payesh. 2011;10(4):439-47.##16. Hosseini S, Rajabzadeh R, Shoraka V, Avaznia A, Shoraka H. Prevalence of Pediculosis and its related factors among primary school students in Maneh- Semelghan district. J North Khorasan Univ Med Sci. 2014;6(1):43-9.##17. Moradi A, Bathaii SJ, Shojaeian M, Neshani A, Rahimi M, Mostafavi E. Outbreak of Pediculosis capitis in students of Bahar in Hamedan province. J Cosmet Dermatol. 2012;3(1):26-32.##18. Rajabzade R, Shoraka H, Arzamani K, Shahiri M, Emami O, Hosseini S. Epidemiology of Pediculosis capitis infestation and its associated factors in students. J North Khorasan Univ Med Sci. 2015;6(4):755-67.##19. Motlagh ME, Aminaei T, Dashti M, Ardalan G, Alam M. Promoting personal hygiene of students in the field of prevention and treatment of head lice infestation. 1 ed. Tehran: seda 2011.##20. Bahiraei A. Theory at a glance a guide for health promotion practice. 2 ed. Tehran: Noor Danesh 2010.##21. Safari MSD, Ghofranipour F, Heydarnia A, Pakpour A. Health education and promotion theories, models and methods. 2 ed. Tehran: Sobhan 2012.##22. Moshki M, Zamani-Alavijeh F, Mojadam M. Preventive behaviors of female elementary students in regard to Pediculosis infestation based on Health Belief Model (HBM). J Health & Development. 2014;3(3):269-81.##23. MorowatiSharifabad MA, EbrahimZadeh M, Fazeli F, Dehghani A, Neshati T. Study of pediculus capitis prevalence in primary school children and its preventive behaviors determinants based on Health Belief Model in their mothers in Hashtgerd, 2012. J Toloo-e-behdasht. 2016;14(6):198-207.##24. Moshki M, Zamani-Alavijeh F, Mojadam M. Efficacy of peer education for adopting preventive behaviors against head lice infestation in female elementary school students: A randomised controlled trial. PlOS one. 2017;12(1):1-12.##25. Sharifat R, Mohamadian H, Cheragi M, Malehi AS. Impact of theory-based educational intervention on explaining preventive Pediculosis infestation behavior among primary school students. Electronic Physician. 2017;9(4):4101-7.##26. Jadgal MS, Sadeghi S, Zareipour M, Karimi T, Tatari M, Pour ZH. The effect ofintervention on knowledge, attitudes and practice of students regarding Pediculosis. Rahavard Salamat Journal. 2018;3(3):37-45.##27. Norsa adah B, Rusli B, Wil A, Aini I, Naing L. Is health education necessary to control head lice infestation in primary school children? Intern Med J. 2006;13(1):19.##28. Yingklang M, Sengthong C, Haonon O, Dangtakot R, Pinlaor P, Sota C, et al. Effect of a health education program on reduction of Pediculosis in school girls at Amphoe Muang, Khon Kaen Province, Thailand. PlOS one. 2018;13(6):1-15.##29. Riabi HRA, Atarodi A. Epidemiological and clinical study of infested cases with pediculus capitis and P. corporis in Khorasan-e-Razavi, Iran. Iran J Parasitol. 2012;7(1):##30. Sadeghi R, Mazloomy S, Hashemi M, Rezaeian M. The effects of an educational intervention based on the health belief model to enhance HIV-preventive behaviors among male barbers in Sirjan. J Rafsanjan Univ Med Sci. 2016;15(3):235-46.85##31. Ziaee R, Jalili Z, Tvakoli GH. The effect of education based on Health Belief Model (HBM) in improving nutritional behaviors of pregnant women. J North Khorasan Univ Med Sci. 2017;8(3):427-437.##32. Park S, Chang S, Chung C. Effects of a cognition‐emotion focused program to increase public participation in Papanicolaou smear screening. Public Health Nurs. 2005;22(4):289-98.##33. Karimi M, Zareban I, Montazeri A, Amin Shokravi F. The effect of training based on health belief model on preventive behaviors of unwanted pregnancy. Iran J Obstet Gynecol Infertil. 2012;15(23):18-27.##34. Rahnavard Z, Mohammadi M, Rajabi F, Zolfaghari M. An educational intervention using health belief model on smoking preventive behavior among female teenagers. Hayat. 2011;17(3):15-26.##35. Ghasemi B. Evaluation knowledge of parent in the field of oral health care for 6-12 year old children referred to health centers in Zahedan (Dissertation): Zahedan University Medical Science; 2009.##36. Ivari TK, Heshmati H, Faryabi R, Goudarzian Z, Ghodrati A, Najafi F, et al. Effect of Health Belief Model based education on nutritional behaviors of pregnant women referred to health centers in Torbat-e-heydariyeh city. J Health in the Field. 2016;3(4).##37. Hazavehei S, Taghdisi M, Saidi M. Application of the Health Belief Model for osteoporosis prevention among middle school girl students, Garmsar, Iran. Education for health. 2007;20(1):1-11.##38. Mohammadi N, Rafee S. Health education, health team guidance. Tehran: Ministry of Health and Medical Education PreSS: 4; 2004.##39. Mazloomy S, Mirzaei A, Afkhami Ardakani M, Baghiani Moghadam M, Fallahzadeh H. The role of health beliefs in preventive behaviors of individuals at high-risk of type2 diabetes mellitus. J Shaheed Sadoughi Univ Med Sci. 2010;18(1):24-31.##40. Babaei V, Babazadeh T, Kiani A, Garmaroodi G, Batebi A. The role of effective factors in preventive behaviors of brucellosis in stockbreeder of Charaoymaq county: a health belief model. J Fasa Univ Med Sci. 2016;5(4):470-8.86##41. Didarloo A, Sharafkhani N, Sorkhabi Z, Pourali R. Survey of prostate cancer-preventive behaviors based on the health belief model constructs among male teachers of Urmia city, in 2015. J Urmia Nurs Midwifery Fac. 2016;14(3):271-81.##42. Namdar A, Bigizadeh S, Naghizadeh MM. Measuring Health Belief Model components in adopting preventive behaviors of cervical cancer. J Fasa Univ Med Sci.2012;2(1):34-44.##43. Khorsandi M, Shamsi M, Jahani F. The survey of practice about prevention of osteoporosis based on health belief model in pregnant women in Arak City. J Rafsanjan Univ Med Sci. 2013;12(1):35-46.##44. Pormosayebi S, Shamsi M, Khorsandi M, Kolivand A, Ranjbaran M. To measure the structures of HBM for promotion of preventive behaviors of pregnant women exposed to air pollution in Arak city, 2014. J Arak Univ Med Sci. 2015;18(101):18-26.##داوری و همکاران، بررسی اپیدمیو لوژیک شپش سر در فصل پاییز در دانش آموزان شهرستان سردشت 1392، مجله علمی پژوهان ##مدرسی م و همکاران .شیوع آلودگی به شپش سر دربین دانش آموزان مدارس ابتدایی شهرستان تنکابن ، فصلنامه بیماریهای عفونی و گرمسیری 1392##حسینی س و همکاران بررسی عوامل موثر برآلودگی به شپش سر در دانش آموزان مقطع ابتدایی شهرستان مانه و سملقان 1393##ضاربان ا، و همکاران ارزشیابی برنامه آموزش بهداشت به منظور کاهش آلودگی مربوط به شپش سر در دانش آموزان مقطع ابتدایی شهرستان مانه وسملقان 1393##متولی حقی ف، و همکاران بررسی اپیدمیلوژی شپش سر و عوامل موثر بر آن در دانش آموزان مقطع ابتدایی ساری استان مازندران در سال 92-91مجله بهداشت و سلامت 1392 ##

ٍEpidemiology of Road Traffic Injuries in Ilam Province in 2007-2012 بررسی الگوی اپیدمیولوژی مرگ و میر ناشی از سوانح ترافیکی در استان ایلام طی سال های 92-1388 2 1 سوانح ترافیکی از مهمترین مشکلات در دنیا به ویژه کشورهای در حال توسعه است. در اثر حوادث ترافیکی سالانه هزاران نفر به ویژه از گروه های جوان و نان آور خانور جامعه جان خود را از دست داده یا دچار مصدومیت و معلولیت جسمی روحی و روانی می شوند که ممکن است تا آخر عمر نیز ماندگار باشد. روند رو به رشد استفاده از وسایل نقلیه موتوری و افزایش میزان مواجهه مردم با انواع خودرو ها سبب افزایش روزافزون سوانح ترافیکی و در نتیجه موارد مرگ ومیر و مصدومیت شده است. بخش های مختلف جامعه به نوعی درگیر سوانح ترافیکی هستند که در این بین جوانان و میانسالان به سبب شرایط و فعالیت آنها و نقش آنها در امور مختلف جامعه در معرض خطر هرچه بیشتر عوارض سوانح ترافیکی هستند. کاربران راه شامل رانندگان، سرنشینان وسایل نقلیه و عابران پیاده نیز متناسب با نقش آنها در استفاده از وسایل نقلیه و نوع مواجهه با ترافیک بصورت متفاوتی تحت تاثیر سوانح ترافیکی قرار می گیرند. عوامل مختلف مربوط به شخص، محیط، راه و وسیله در پیدایش و شدت عوارض و مصدومیت های حاصل از سوانح جاده ای تاثیرگذار می باشند. مطالعات مختلف نقش عواملی همچون سن، جنسیت، تحصیلات، رعایت مقررات و استفاده از تجهیزات ایمنی مانند بستن کمربند را در پیشگیری و کاهش سوانح و مصدومیت ناشی از آن نشان داده اند. همچنین شرایط اقلیمی و مهندسی راه بعلاوه رعایت استاندارد در ساخت وسایل نقلیه موتوری در پیدایش تصادفات و شدت عوارض و مصدومیت های ناشی از آن نقش مهمی دارند. یکی از اقدامات مهم و اساسی برای انجام مداخلات موثر و کارآمد، شناخت وضعیت دقیق از رخداد سوانح ترافیکی و توزیع انواع مصدومیت ها در جامعه و کاربران راه است. با این اقدام و شناخت هرچه بیشتر گروه های آسیب پذیر امکان پیدا کردن راه های کاهش و کنترل تصادفات بهتر شناخته می شود و امکان مداخلات نیز آسانتر خواهد بود. با توجه به اینکه استان ایلام نیز شاهد بروز موارد روزافزون سوانح ترافیکی و مرگ و میر ناشی از آن است، این تحقیق با هدف بررسی الگوی مرگ و میر ناشی از سوانح ترافیکی در استان ایلام در طی سال های 92-1388 پیشنهاد می شود. 2 Road traffic crashes (RTCs) are major public health challenges of world health systems, and the main lead‑ ing cause of death in children and young adults aged 5 to 29 years. This study aimed to assess the epidemiology of RTCs in Ilam, Iran. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/142017/08/202017/10/72018/12/31 1397/10/10 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/162017/10/242017/10/242019/03/1 1397/12/10 علی خورشیدی Ali Khorshidi مرکز تحقیقات آسیب‌های روانی و اجتماعی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران ali_482002@yahoo.com مرضیه منصوری جلیلیان marzieh mansoori jalilian ایران mansoorijalilian@gmail.com Ilam Injury Epidemiology traffic Road سوانح ترافیکی ایلام اپیدمیولوژی مصدومیت ## ##

Study the Effectiveness of the Radiofrequency Ablation treatment for Varicose Veins: A Systematic Review and Meta-Analysis Study بررسی کارایی استفاده از رادیوفرکونسی در درمان رگ های واریسی: به روش مرور منظم و متاآنالیز 2 1 نارسایی وریدی یکی از اختلالات شایع در سراسر جهان است. شیوع ریفلاکس وریدی سطحی در وریدهای صافنوس و شاخه های آن ها در بالغین در کشورهای غربی حدود 40-30 درصد است. روش های درمانی مختلفی برای این اختلال معرفی شده است که نتایج مختلفی را گزارش کرده اند. مطالعات مختلفی به بررسی نقش استفاده از رادیوفرکونسی پرداخته اند که نتایج مختلفی را گزارش کرده اند. با توجه به شیوع بالای وریدهای واریسی در جامعه، اهمیت شناسایی درمانی موثر با کمترین میزان عارضه مشخص است، بنابراین با توجه به اهمیت موضوع ما در یک مطالعه ی مرور منظم و متاآنالیز برآنیم با بررسی مطالعات قبلی به بررسی کارایی استفاده از رادیوفرکونسی در درمان وریدهای واریسی بپردازیم. به منظور دست یابی به یافته های این پژوهش با استفاده از کلیدواژه های Varicose Veins, radiofrequency ablation, Venous insufficiency , treatment در مقالات چاپ شده در سطح جهانی در بانک های اطلاعاتی Scopus، Science direct، Magiran،Embase, SID, Cochrane library, web of science ،Pubmed وGoogle scholar به جست و جو می پردازیم و پس از جمع آوری اطلاعات با استفاده از روش متاآنالیز به بررسی این موضوع می پردازیم. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/142017/08/202017/10/72018/12/312019/05/12 1398/2/22 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/162017/10/242017/10/242019/03/12019/08/27 1398/6/5 سمیرا ترده Samira Tardeh دانشگاه علوم پزشکی ایلام ایران s.tardeh1999@gmail.com زینب ترده zeinab Tardeh ایران z.tardeh@gmail.com محمد کریمیان Mohammad Karimian گروه آموزشی جراحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران drkarimian70@yahoo.com کورش سایه میری Kourosh Sayehmiri مرکز تحقیقات آسیب‌های روانی و اجتماعی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران sayehmiri-k@medilam.ac.ir Varicose Veins Radiofrequency Meta-Analysis رگ واریسی رادیوفرکونسی متاانالیز ## ##

Establishing a hospital based clinical registry system for Coronaviruses Disease in mostafa Khomeini hospital, Ilam برنامه ثبت بیماری کروناویروس(کویید 19) در بیمارستان شهید مصظفی خمینی (ره) ایلام 2 1 COVID-19 نوعی کروناویروس متعلق به خوشه بتا کروناویروس می باشد و سومین ن.ع عفونت های کرونایی زونوتیک را بعد از SARS وmers ایجاد می کند. تعداد کل مبتلایان بر اساس آخرین آمار روز 102472 نفر، تعدلد کل موارد مرگ و میر 3491 نفر و تعداد کل موارد بهبود یافته 57463 نفر در سطح جهان بوده است. بیشترین تعداد موارد بیماری در منطقه آسیای جنوب شرقی(از جمله کشور های چین، ژاپن، کره ی جنوبی) و خاورمیانه(ایران، کویت، بحرین، امارات) و سپس اروپا(ایتالیا، آلمان، فرانسه و اسپانیا) و آمریکا است، به نوعی این مناطق خوشه های پر خطر و hotspot را تشکیل می دهند(7 و 8). در ایران، به دنبال فوت ۲ بیمار با عوارض تنفسی در بیمارستان کامکار قم، دربارهی مرگ این بیماران به علت کروناویروس شکل گرفت. و اولین موارد از کرونای جدید در شهر قم از طریق روابط عمومی وزارت بهداشت گزارش شد. و با اعلام رسمی فوت شدن چهار نفر، ایران پس از چین بیشترین تلفات ناشی از کروناویروس را داشته‌است و به تدریج آمار میزان بروز این بیماری در کل ایران بالا رفت بطوریکه تا اواخر اسفند ماه 1398 تعداد مبتلایان در کل کشور 14 هزار نفر و تعداد موارد فوت به 800 مورد رسید. سازمان بهداشت جهانی (WHO) به تازگی بیماری کروناویروس 2019 (Covid-19) را اضطراری بهداشت عمومی با نگرانی بین المللی اعلام کرده است. با توجه به بررسی های اولیه همزمان با راه اندازی برنامه های ثبت موارد بیماری در کل کشور، مطالعه ای در خصوص طراحی و ایجاد برنامه ثبت در استان ایلام انجام پایه ریزی شد . چون نیاز به یک برنامه ثبت بیماری کروناویروس در این حوزه برای بهبود مراقبت های پیشگیری و درمانی و همچنین تحقیقات و پژوهش وجود خواهد داشت. این پژوهش با هدف ایجاد برنامه ثبت کروناویروس در جهت ایجاد زمینه بهبود کیفیت مراقبت از این بیماران و کاهش اپیدمی این بیماری در استان ایلام انجام می شود. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/142017/08/202017/10/72018/12/312019/05/122020/04/4 1399/1/16 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/162017/10/242017/10/242019/03/12019/08/272020/06/16 1399/3/27 محمدرضا کفاشیان Mohamadreza Kafashian گروه آموزشی فیزیولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران m_r_kaffashian@yahoo.com محمد کریمیان Mohammad Karimian گروه آموزشی جراحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران drkarimian70@yahoo.com غلامرضا کلوندی Gholamreza Kalvandi مرکز تحقیقات آسیب‌های روانی و اجتماعی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران pezeshk1351@yahoo.com عباس قیصوری Abbas Ghaysouri گروه آموزشی داخلی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران ghaysouri-a@medilam.ac.ir نورخدا صادقی فرد Nourkhoda Sadeghifard مرکز تحقیقات میکروب شناسی بالینی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران sadeghifard@gmail.com جلیل فیضی Jalil Feizi گروه آموزشی بیماری‌های عفونی و طب گرمسیری، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران feizi.j@gmail.com علی نظری Ali Nazari گروه آموزشی بیماری‌های عفونی و طب گرمسیری، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران dralinazari@yahoo.com ابراهیم کوهساری Ebrahim Kouhsari مرکز تحقیقات میکروب شناسی بالینی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران ekouhsari1987@gmail.com عذرا کنارکوهی Azra Kenarkoohi دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران a.kenarkoohi@gmail.com شوبو رحمتی Shoboo Rahmati دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران shoboorahmati2014@gmail.com علی اشرف مظفری Aliashraf Mozafari بیمارستان شهید مصطفی خمینی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران amozafari99@yahoo.com ایرج احمدی Iraj Ahmadi گروه آموزشی فیزیولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران ahmadiiraj96@gmail.com 2019 (Covid-19) بیماری کروناویروس(کویید 19) 1. Shen X, Pu Z, Li Y, Yu S, Guo F, Luo T, et al. Phylogeographic patterns of the African swine fever##virus. J Infect. 2019;79(2):174-87.##2. Li X, Xiao K, Zhang Z, Yang J, Wang R, Shen X, et al. The recombination hot spots and genetic##diversity of the genomes of African swine fever viruses. J Infect. 2020;80(1):121-42.##3. Song Z, Xu Y, Bao L, Zhang L, Yu P, Qu Y, et al. From SARS to MERS, thrusting coronaviruses into##the spotlight. Viruses. 2019;11(1):E59.##4. Zhou P, Fan H, Lan T, Yang XL, Shi WF, Zhang W, et al. Fatal swine acute diarrhoea syndrome##caused by an HKU2-related coronavirus of bat origin. Nature. 2018;556(7700):255-8.##5. Gong L, Li J, Zhou Q, Xu Z, Chen L, Zhang Y, et al. A new bat-HKU2-like coronavirus in swine,##China, 2017. Emerg Infect Dis. 2017;23(9).##6. Wang R, Zhang X, Irwin DM, Shen Y. Emergence of SARS-like Coronavirus poses new challenge in China. Journal of Infection. 2020 Mar 1;80(3):350-71.##7. The center for systems science and engineering at johns Hopkins university.##8. Novel coronavirus(2019-n CoV) situation reports- world health organization(WHO).##9. Ge XY, Li JL, Yang XL, Chmura AA, Zhu G, Epstein JH, et al. Isolation and characterization of a bat SARS-like coronavirus that uses the ACE2 receptor. Nature. 2013;503(7477):535-8. 7. Li W, Shi Z, Yu M, Ren W, 10. Smith C, Epstein JH, et al. Bats are natural reservoirs of SARS-Like coronaviruses. Science. 2005;310(5748):676-9.##11. Guan Y, Zheng BJ, He YQ, Liu XL, Zhuang ZX, Cheung CL, et al. Isolation and characterization of viruses related to the SARS coronavirus from animals in southern China. Science. 2003;302(5643):276-8. 9. Woo 12. PCY, Huang Y, Lau SKP, Yuen K-Y. Coronavirus Genomics and Bioinformatics Analysis. Viruses. 2010;2(8):1804-20.##13. Guan WJ, Ni ZY, Hu Y, Liang WH, Ou CQ, He JX, Liu L, Shan H, Lei CL, Hui DS, Du B. Clinical characteristics of coronavirus disease 2019 in China. New England Journal of Medicine. 2020 Feb 28.##14. Hu Z, Song C, Xu C, Jin G, Chen Y, Xu X, et al. Clinical characteristics of 24 asymptomatic infections with COVID-19 screened among close contacts in Nanjing, China. Science China Life Sciences. 2020:1-6.##15. Zhou T, Liu Q, Yang Z, Liao J, Yang K, Bai W, et al. Preliminary prediction of the basic reproduction number of the Wuhan novel coronavirus 2019‐nCoV. Journal of Evidence‐Based Medicine. 2020.##16. Wang R, Zhang X, Irwin DM, Shen Y. Emergence of SARS-like Coronavirus poses new challenge in China. Journal of Infection. 2020;80(3):350-71.##17. Sun P, Qie S, Liu Z, Ren J, Li K, Xi J. Clinical characteristics of 50466 hospitalized patients with 2019‐nCoV infection. Journal of Medical Virology. 2020 Feb 28.##18. WEI, Xuxu, et al. The global registry of COVID-19 clinical trials: indicating the design of traditional Chinese medicine clinical trials. TMR Modern Herbal Medicine, 2020, 1.‌##19. JAVANMARD, Shaghayegh Haghjooy, et al. Isfahan COvid-19 REgistry (I-CORE): Design and methodology. Journal of Research in Medical Sciences, 2020, 25.1: 32.‌##20. TALEBPOUR, Mohammad, et al. Rationale and Design of a Registry in a Referral and Educational Medical Center in Tehran, Iran: Sina Hospital Covid-19 Registry (SHCo-19R). Advanced Journal of Emergency Medicine, 2020.‌##1. Shen X, Pu Z, Li Y, Yu S, Guo F, Luo T, et al. Phylogeographic patterns of the African swine fever##virus. J Infect. 2019;79(2):174-87.##2. Li X, Xiao K, Zhang Z, Yang J, Wang R, Shen X, et al. The recombination hot spots and genetic##diversity of the genomes of African swine fever viruses. J Infect. 2020;80(1):121-42.##3. Song Z, Xu Y, Bao L, Zhang L, Yu P, Qu Y, et al. From SARS to MERS, thrusting coronaviruses into##the spotlight. Viruses. 2019;11(1):E59.##4. Zhou P, Fan H, Lan T, Yang XL, Shi WF, Zhang W, et al. Fatal swine acute diarrhoea syndrome##caused by an HKU2-related coronavirus of bat origin. Nature. 2018;556(7700):255-8.##5. Gong L, Li J, Zhou Q, Xu Z, Chen L, Zhang Y, et al. A new bat-HKU2-like coronavirus in swine,##China, 2017. Emerg Infect Dis. 2017;23(9).##6. Wang R, Zhang X, Irwin DM, Shen Y. Emergence of SARS-like Coronavirus poses new challenge in China. Journal of Infection. 2020 Mar 1;80(3):350-71.##7. The center for systems science and engineering at johns Hopkins university.##8. Novel coronavirus(2019-n CoV) situation reports- world health organization(WHO).##9. Ge XY, Li JL, Yang XL, Chmura AA, Zhu G, Epstein JH, et al. Isolation and characterization of a bat SARS-like coronavirus that uses the ACE2 receptor. Nature. 2013;503(7477):535-8. 7. Li W, Shi Z, Yu M, Ren W, 10. Smith C, Epstein JH, et al. Bats are natural reservoirs of SARS-Like coronaviruses. Science. 2005;310(5748):676-9.##11. Guan Y, Zheng BJ, He YQ, Liu XL, Zhuang ZX, Cheung CL, et al. Isolation and characterization of viruses related to the SARS coronavirus from animals in southern China. Science. 2003;302(5643):276-8. 9. Woo 12. PCY, Huang Y, Lau SKP, Yuen K-Y. Coronavirus Genomics and Bioinformatics Analysis. Viruses. 2010;2(8):1804-20.##13. Guan WJ, Ni ZY, Hu Y, Liang WH, Ou CQ, He JX, Liu L, Shan H, Lei CL, Hui DS, Du B. Clinical characteristics of coronavirus disease 2019 in China. New England Journal of Medicine. 2020 Feb 28.##14. Hu Z, Song C, Xu C, Jin G, Chen Y, Xu X, et al. Clinical characteristics of 24 asymptomatic infections with COVID-19 screened among close contacts in Nanjing, China. Science China Life Sciences. 2020:1-6.##15. Zhou T, Liu Q, Yang Z, Liao J, Yang K, Bai W, et al. Preliminary prediction of the basic reproduction number of the Wuhan novel coronavirus 2019‐nCoV. Journal of Evidence‐Based Medicine. 2020.##16. Wang R, Zhang X, Irwin DM, Shen Y. Emergence of SARS-like Coronavirus poses new challenge in China. Journal of Infection. 2020;80(3):350-71.##17. Sun P, Qie S, Liu Z, Ren J, Li K, Xi J. Clinical characteristics of 50466 hospitalized patients with 2019‐nCoV infection. Journal of Medical Virology. 2020 Feb 28.##18. WEI, Xuxu, et al. The global registry of COVID-19 clinical trials: indicating the design of traditional Chinese medicine clinical trials. TMR Modern Herbal Medicine, 2020, 1.‌##19. JAVANMARD, Shaghayegh Haghjooy, et al. Isfahan COvid-19 REgistry (I-CORE): Design and methodology. Journal of Research in Medical Sciences, 2020, 25.1: 32.‌##20. TALEBPOUR, Mohammad, et al. Rationale and Design of a Registry in a Referral and Educational Medical Center in Tehran, Iran: Sina Hospital Covid-19 Registry (SHCo-19R). Advanced Journal of Emergency Medicine, 2020.‌ ##

Prevalence of Attention Deficit Hyperactivity Disorder (ADHD) in the Elderly of Babol County in 1399 and classification of the Elderly by ADHD and accompanied disorders using Latent Class analysis شیوع اختلال بیش فعالی و کم توجهی(ADHD ) در سالمندان شهرستان بابل در سال 1399 و طبقه بندی سالمندان بر حسب ADHD و اختلالات همراه با استفاده از آنالیز کلاس پنهان 2 1 سالمندی فرآیندی است که در تمام موجودات زنده از جمله انسان اتفاق می افتد و به عنوان یک پدیده همگانی، مسیر تغییرات فیزیولوژیکی و روانی طبیعی را با کنشها و واکنشهای اجتماعی متفاوت نشان می دهد. سالمندی دوره ای است که در آن تغییراتی در شکل و عملکرد اندام های درونی و بیرونی بدن بوجود می آید که سازگاری فرد با محیط را مشکل می سازد. تغییرات در سوخت و ساز بدن، باعث کاهش فعالیت های عضلانی عصبی و تغییر در وضع ظاهری اندام می شود. سالمندی یک بیماری نمی باشد، بلکه ضرورتی اجتناب ناپذیر در زندگی و مسیرطبیعی رشد است. اختلال بیش فعالی و کم توجهی (ADHD) ، یک اختلال روانپزشکی است که نشانه هایی مانند نقص توجه، بیش فعالی و رفتار تکانشگری دارد. مشکلات تمرکز و سیستم حرکتی، تکانشگری، به هم ریختگی، عدم تحمل استرس، تغییرات هیجانی و خلقی فرد و احتمالا اختلال در روابط بین فردی، نشان دهنده ADHD در بزرگسالان است. افراد بالغ مبتلا به اختلال، در برنامه ریزی، کامل کردن و به پایان رساندن تکالیف، انجام دادن به وقت وظایف کاری، گوش کردن به صحبت های دیگران، حفظ توجه هنگام خواندن، تصمیم گیری به همراه تفکر، ناپایداری عاطفی، عصبانیت های ناگهانی و شدید، پاسخ های هیجانی شدید، آشفتگی در انجام کارها، بی ثبات بودن در روابط بین فردی، سوء مصرف الکل و پاسخ های غیرمعمول به روان درمانی مشکل دارند. اختلالات روان شناختی در سالمندان به دلیل پایین بودن محرومیت های اجتماعی،پایین بودن کیفیت زندگی و اختلالات شناختی، افزایش خطر اختلالات جسمی،متداول می باشد. در حال حاضر ADHD در کودکان مورد توجه جدی قرار می گیرد و معمولا موارد زیادی از آن تشخیص داده می شود با این حال مشکلات همراه این اختلال معمولا مورد توجه زیادی قرار نمی گیرند. علاوه بر این ADHD اساسا در بزگسالان مورد توجه زیادی قرار نمی گیرد. در سالمندان نیز مشابه با بزرگسالان این مشکل اصلا جدی گرفته نمی شود. هم وقوعی این اختلال در سالمندان با دیگر مشکلات شایع سالمندی می توان کیفیت زندگی این افراد را بشدت کاهش دهد. با توجه به افزایش جمعیت سالمندان ، بررسی وضعیت سلامت روان و شیوع اختلالات روان در آنان می تواند برای برنامه ریزی ها و مداخلات بهداشتی مناسب، کارگشا باشد و با توجه به مطالعات و بررسی های انجام شده و به دلیل انجام نشدن چنین مطالعه ای در شهرستان بابل محقق بر آن شد، مطالعه ای با هدف شیوع اختلال بیش فعالی و کم توجهی ( ADHD ) در سالمندان شهرستان بابل سال ۱۳۹۹ و طبقه بندی سالمندان بر حسب ADHD و اختلالات همراه با استفاده از آنالیز کلاس پنهان انجام دهد. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/142017/08/202017/10/72018/12/312019/05/122020/04/42020/10/26 1399/8/5 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/162017/10/242017/10/242019/03/12019/08/272020/06/162021/02/1 1399/11/13 رویا فرخی roya farokhi ایران farokhi.roya2@gmail.com علی خورشیدی Ali Khorshidi مرکز تحقیقات آسیب‌های روانی و اجتماعی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران ali_482002@yahoo.com عباس عباسی قهرمانلو abbas abbasighahramanlo ایران abbasi.abbas49@yahoo.com مرضیه رستم خانی Marzieh Rostamkhani مرکز تحقیقات آسیب‌های روانی و اجتماعی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران dr.rostamkhani@yahoo.com ADHD LCA ELDERLY BABOL اختلال بیش فعالی و کم توجهی ال سی ای سالمندان بابل ## ##

Transdifferentiation of the human umblical cord-derived mesenchymal stem cells to dopaminergic neuron on conductive hydrogel بررسی تمایز سلولهای بنیادی مزانشیمی مشتق از بند ناف به نورون های دوپامینرژیک بر روی هیدروژل کانداکتیو 2 1 بیماری پارکینسون (Parkinson’s disease, PD) یکی از رایج ترین اختلالات مربوط به تخریب سیستم اعصاب مرکزی می باشد که تقریبا یک درصد افراد بالای 50 سال را در حال حاضر مبتلا کرده است. بیماری پارکینسون یک بیماری تحلیل رونده عصبی است که حاصل از دست رفتن تدریجی نورون ها ی دوپامینرژیک در جسم سیاه مغز میانی است. در کلینیک این بیماری بوسیله علائم حرکتی نظیر سفتی عضلانی، ، لرزش در استراحت، کندی حرکت و گام برداشتن مشخص می گردد. همچنین سایر علائم نظیر اختلال در هوشیاری، حافظه و ادراک نیز از علائم پارکینسون می باشد سلول های بنیادی مزانشیمی مشتق از بند ناف انسان (Human Umbilical Cord-derived Mesenchymal Stem Cells, hUCMSCs) یکی از سلولهای است که توانایی بالقوه ای جهت تکثیر و تمایز به سایر سلولها از جمله نورون ها را دارند (13,14). این سلول ها با توجه به دسترسی آسان، گسترش سریع در محیط کشت و بقای طولانی مدت در بافت میزبان می توانند به عنوان یک منبع ایده ال در پروسه های رژنراتیو بکار روند. علاوه بر این سلول های مذکور به مشابه سلول های بنیادی مزانشیمی مغز استخوان ایمونوژنسیته پایینی دارند و با توجه به خاصیت تومورژنیک اندک به نظر می رسد گزینه مناسبی برای پیوند آلوژنیک محسوب می گردند از این رو در این مطالعه از این منبع سلولی جهت تمایز و تولید سلول فانکشنال دوپامینرژیک استفاده می گردد. علاوه بر این سایر بررسی ها حاکی از این است که سلول های بنیادی مزانشیمی مشتق از بند ناف انسان دارای قدرت تمایزی به سمت سلول های چربی، غضروفی، استخوانی و سایر رده های سلولی می باشند و همچنین قادرند با واسطه مواد القا، کننده عصبی پروسه ترانس دیفرانسیه را در محیط Invitro وIn Vivo طی کنند و به سمت سلول هایی عصبی و گلیالی پیش بروند 2 Parkinson's disease (PD) is one of the most common disorders related to the destruction of the central nervous system, which affects almost one percent of people over 50 years old. Parkinson's disease is a neurodegenerative disease that results from the gradual loss of dopaminergic neurons in the substantia nigra of the midbrain. In the clinic, this disease is characterized by movement symptoms such as muscle stiffness, tremors at rest, slowness of movement and walking. Also, other symptoms such as impaired consciousness, memory and perception are also symptoms of Parkinson's Human umbilical cord-derived mesenchymal stem cells (hUCMSCs) are one of the cells that have the potential to multiply and differentiate into other cells, including neurons (13,14). These cells can be used as an ideal source in regenerative processes due to easy access, rapid expansion in the culture medium and long-term survival in the host tissue. In addition, the mentioned cells have low immunogenicity, similar to bone marrow mesenchymal stem cells, and due to their low tumorigenic properties, they seem to be a suitable option for allogeneic transplantation. Therefore, in this study, this cell source is used for differentiation and production. Dopaminergic functional cell is used. In addition, other studies indicate that mesenchymal stem cells derived from the human umbilical cord have differentiating power towards fat, cartilage, bone and other cell lines and are also able to stimulate the nerve process through inducing substances. undergo transdifferentiation in invitro and in vivo environments and move towards nerve and glial cells 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/142017/08/202017/10/72018/12/312019/05/122020/04/42020/10/262020/12/2 1399/9/12 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/162017/10/242017/10/242019/03/12019/08/272020/06/162021/02/12021/02/14 1399/11/26 اردشیر معیری Ardeshir Moayeri گروه آموزشی آناتومی و تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران moayeri46@yahoo.com هاتف قاسمی حمیدآبادی Hatef Ghasemi Hamidabadi گروه آناتومی دانشکده پزشکی علوم پزشکی مازندران ایران hatefdr@gmail.com مرضیه درویشی Marzieh Darvishi گروه آموزشی آناتومی و تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران marzidarvish@yahoo.com Differentiation Dopaminergic neurons Human umbilical cord mesenchymal stem cells تمایز دوپامینرژیک نورون ها سلول های بنیادی مزانشیمی بند ناف 1- De Lau, L. M., & Breteler, M. M. (2006). Epidemiology of Parkinson's disease. The Lancet Neurology, 5(6), 525-535.##2- Choi, W. S., Palmiter, R. D., & Xia, Z. (2011). Loss of mitochondrial complex I activity potentiates dopamine neuron death induced by microtubule dysfunction in a Parkinson’s disease model. The Journal of cell biology, 192(5), 873-882.##3- Thomas, B., & Beal, M. F. (2011). Molecular insights into Parkinson’s disease. F1000 Med Rep, 3(7).##4- Potashkin, J. A., Blume, S. R., & Runkle, N. K. (2010). Limitations of animal models of Parkinson's disease. Parkinson’s disease, 2011.##5- Bové, J., Prou, D., Perier, C., & Przedborski, S. (2005). Toxin-induced models of Parkinson's disease. NeuroRx, 2(3), 484-494.##6- Kuan, W. L., & Barker, R. A. (2005). New therapeutic approaches to Parkinson’s disease including neural transplants. Neurorehabilitation and neural repair, 19(3), 155-181.##7- Shen, W. B., McDowell, K. A., Siebert, A. A., Clark, S. M., Dugger, N. V., Valentino, K. M., ... & Jafri, M. S. (2010). Environmental neurotoxin‐induced progressive model of parkinsonism in rats. Annals of neurology, 68(1), 70-80.##8- Miller, R. H. (2006). The promise of stem cells for neural repair. Brain research, 1091(1), 258-264.##9- Calzà, L., Giuliani, A., Fernandez, M., Pirondi, S., D'Intino, G., Aloe, L., & Giardino, L. (2003). Neural stem cells and cholinergic neurons: regulation by immunolesion and treatment with mitogens, retinoic acid, and nerve growth factor. Proceedings of the National Academy of Sciences, 100(12), 7325-7330.##10- Ye, M., Wang, X. J., Zhang, Y. H., Lu, G. Q., Liang, L., Xu, J. Y., & Chen, S. D. (2007). Therapeutic effects of differentiated bone marrow stromal cell transplantation on rat models of Parkinson's disease. Parkinsonism & related disorders, 13(1), 44-49.##11- Suon, S., Yang, M., & Iacovitti, L. (2006). Adult human bone marrow stromal spheres express neuronal traits in vitro and in a rat model of Parkinson's disease. Brain research, 1106(1), 46-51.##12- Zuk, P. A., Zhu, M., Ashjian, P., De Ugarte, D. A., Huang, J. I., Mizuno, H., ... & Hedrick, M. H. (2002). Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells. Molecular biology of the cell, 13(12), 4279-4295.##13- Peng J, Wang Y, Zhang L, Zhao B, Zhao Z, Chen J, et al. Human umbilical cord Wharton’s jelly-derived mesenchymal stem cells differentiate into a Schwann cell phenotype and promote neurit outgrowth in vitro. Brain Res Bull. 2011; 84(3): 235-43.##14- Yoo KH, Jang IK, Lee MW, Kim HE, Yang MS, Eom Y, et al. Comparison of immunomodulatory properties of mesenchymal stem cells derived from adult human tissues. Cell Immunol. 2009; 259(2): 150-6.##15- Liang, D., Hsiao, B. S., & Chu, B. (2007). Functional electrospun nanofibrous scaffolds for biomedical applications. Advanced drug delivery reviews, 59(14), 1392-1412.##16- Schmidt, C. E., & Leach, J. B. (2003). Neural tissue engineering: strategies for repair and regeneration. Annual review of biomedical engineering, 5(1), 293-347.##17- Chao, D., Lu, X., Chen, J., Zhao, X., Wang, L., Zhang, W., & Wei, Y. (2006). New method of synthesis of electroactive polyamide with amine‐capped aniline pentamer in the main chain. Journal of Polymer Science Part A: Polymer Chemistry, 44(1), 477-482.##18- Cui, Z., Ni, N. C., Wu, J., Yau, T. M., Weisel, R. D., & Li, R. K. (2015). An Injectable Conductive Polymer Hydrogel Improves Electrical Conduction Velocity in the Injured Heart.##19- Correia, A. S., Anisimov, S. V., Li, J. Y., & Brundin, P. (2005). Stem cell‐based therapy for Parkinson's disease. Annals of medicine, 37(7), 487-498.##20- Kirik, D., Breysse, N., Björklund, T., Besret, L., & Hantraye, P. (2005). Imaging in cell-based therapy for neurodegenerative diseases. European journal of nuclear medicine and molecular imaging, 32(2), S417-S434.##21- Tan, X. F., Jin, G. H., Tian, M. L., Qin, J. B., Zhang, L., Zhu, H. X., & Li, H. M. (2011). The co‐transduction of Nurr1 and Brn4 genes induces the differentiation of neural stem cells into dopaminergic neurons. Cell biology international, 35(12), 1217-1223.##22- Lindvall, O., Kokaia, Z., & Martinez-Serrano, A. (2004). Stem cell therapy for human neurodegenerative disorders–how to make it work.##23- Backlund, E. O., Granberg, P. O., Hamberger, B., Knutsson, E., Mårtensson, A., Sedvall, G., ... & Olson, L. (1985). Transplantation of adrenal medullary tissue to striatum in parkinsonism: first clinical trials. Journal of neurosurgery, 62(2), 169-173.##24- Reubinoff, B. E., Itsykson, P., Turetsky, T., Pera, M. F., Reinhartz, E., Itzik, A., & Ben-Hur, T. (2001). Neural progenitors from human embryonic stem cells. Nature biotechnology, 19(12), 1134-1140.##25- Zhang, S. C., Wernig, M., Duncan, I. D., Brüstle, O., & Thomson, J. A. (2001). In vitro differentiation of transplantable neural precursors from human embryonic stem cells. Nature biotechnology, 19(12), 1129-1133.##26- Li, Y., Chen, J., Wang, L., Zhang, L., Lu, M., & Chopp, M. (2001). Intracerebral transplantation of bone marrow stromal cells in a 1-methyl-4-phenyl-1, 2, 3, 6-tetrahydropyridine mouse model of Parkinson's disease. Neuroscience letters, 316(2), 67-70.##27- Preynat-Seauve, O., Burkhard, P. R., Villard, J., Zingg, W., Ginovart, N., Feki, A., ... & Krause, K. H. (2009). Pluripotent stem cells as new drugs? The example of Parkinson's disease. International journal of pharmaceutics, 381(2), 113-121.##28- Svendsen, C. N., Caldwell, M. A., Shen, J., ter Borg, M. G., Rosser, A. E., Tyers, P., ... & Dunnett, S. B. (1997). Long-term survival of human central nervous system progenitor cells transplanted into a rat model of Parkinson's disease. Experimental neurology, 148(1), 135-146.##29- Danielyan, L., Schäfer, R., von Ameln-Mayerhofer, A., Bernhard, F., Verleysdonk, S., Buadze, M., ... & Koehle, C. (2011). Therapeutic efficacy of intranasally delivered mesenchymal stem cells in a rat model of Parkinson disease. Rejuvenation research, 14(1), 3-16.##30- Hayakawa, H., Hayashita-Kinoh, H., Nihira, T., Seki, T., Mizuno, Y., & Mochizuki, H. (2007). The isolation of neural stem cells from the olfactory bulb of Parkinson's disease model. Neuroscience research, 57(3), 393-398.##31- Murrell, W., Wetzig, A., Donnellan, M., Féron, F., Burne, T., Meedeniya, A., ... & Mackay‐Sim, A. (2008). Olfactory mucosa is a potential source for autologous stem cell therapy for Parkinson's disease. Stem cells, 26(8), 2183-2192.##32- Meredith, G. E., Sonsalla, P. K., & Chesselet, M. F. (2008). Animal models of Parkinson’s disease progression. Acta neuropathologica, 115(4), 385-398.##33- Rauch, F., Schwabe, K., & Krauss, J. K. (2010). Effect of deep brain stimulation in the pedunculopontine nucleus on motor function in the rat 6-hydroxydopamine Parkinson model. Behavioural brain research, 210(1), 46-53.##34- Meredith, G. E., & Kang, U. J. (2006). Behavioral models of Parkinson's disease in rodents: a new look at an old problem. Movement disorders, 21(10), 1595-1606.##35- Schober, A. (2004). Classic toxin-induced animal models of Parkinson’s disease: 6-OHDA and MPTP. Cell and tissue research, 318(1), 215-224.##36- Deumens, R., Blokland, A., & Prickaerts, J. (2002). Modeling Parkinson's disease in rats: an evaluation of 6-OHDA lesions of the nigrostriatal pathway. Experimental neurology, 175(2), 303-317.##37- Wichterle H, Lieberam I, Porter JA, Jessell TM. Directed differentiation of embryonic stem cells into motor neurons. Cell 2002;110:385–397##38- Li XJ. Directed differentiation of ventral spinal progenitors and motor neurons from human embryonic stem cells by small molecules. Stem Cells.2008;26:886–893##39- Lee SK, Lee B, Ruiz EC, Pfaff SL. Olig2 and Ngn2 function in opposition to modulate gene expression in motor neuron progenitor cells. Genes Dev 2005;19:282–294##40- Jiang Y, Lv H, Huang S, Tan H, Zhang Y, Li H. Bone marrow mesenchymal stem cells can improve the motor function of a Huntington's disease rat model. Neurol Res 2011;33(3):331-7##41- Yoshihara, H., Shumsky ,JS., Neuhuber, B., Otsuka ,T., Fischer, I., Murray, M.( 2006)Combining motor training with transplantation of rat bone marrow stromal cells does not improve repair or recovery in rats with thoracic contusion injuries.Brain Res. ;1119(1):65-75##42- Yoshihara H, Shumsky JS, Neuhuber B, Otsuka T, Fischer I, Murray M. Combining motor training with transplantation of rat bone marrow stromal cells does not improve repair or recovery in rats with thoracic contusion injuries. Brain Res 2006 ;1119(1):65-75##43- Prabhakaran, M.P., J. Venugopal, and S. Ramakrishna, Electrospun nanostructured scaffolds for bone tissue engineering. Acta Biomaterialia, 2009. 5(8): p. 2884-2893##44- hin, S., S. Dalton, and S.L. Stice, Human motor neuron differentiation from human embryonic stem cells. Stem cells and development, 2005. 14(3): p. 266-269.##45- Kim, T. E., Lee, H. S., Lee, Y. B., Hong, S. H., Lee, Y. S., Ichinose, H., ... & Lee, M. A. (2003). Sonic hedgehog and FGF8 collaborate to induce dopaminergic phenotypes in the Nurr1-overexpressing neural stem cell. Biochemical and biophysical research communications, 305(4), 1040-1048.##46- Fu, Y. S., Cheng, Y. C., Lin, M. Y. A., Cheng, H., Chu, P. M., Chou, S. C., ... & Sung, M. S. (2006). Conversion of human umbilical cord mesenchymal stem cells in Wharton's jelly to dopaminergic neurons in vitro: potential therapeutic application for Parkinsonism. Stem cells, 24(1), 115-124.##47- Roy, N. S., Cleren, C., Singh, S. K., Yang, L., Beal, M. F., & Goldman, S. A. (2006). Functional engraftment of human ES cell–derived dopaminergic neurons enriched by coculture with telomerase-immortalized midbrain astrocytes. Nature medicine, 12(11), 1259-1268.##48- Takagi, Y., Takahashi, J., Saiki, H., Morizane, A., Hayashi, T., Kishi, Y., ... & Hayashi, H. (2005). Dopaminergic neurons generated from monkey embryonic stem cells function in a Parkinson primate model. The Journal of clinical investigation, 115(1), 102-109.##49- Eisch, A. J., Cameron, H. A., Encinas, J. M., Meltzer, L. A., Ming, G. L., & Overstreet-Wadiche, L. S. (2008). Adult neurogenesis, mental health, and mental illness: hope or hype?. Journal of Neuroscience, 28(46), 11785-11791.##50- Ling, Z. D., Potter, E. D., Lipton, J. W., & Carvey, P. M. (1998). Differentiation of mesencephalic progenitor cells into dopaminergic neurons by cytokines. Experimental neurology, 149(2), 411-423.##51- Storch, A., Lester, H. A., Boehm, B. O., & Schwarz, J. (2003). Functional characterization of dopaminergic neurons derived from rodent mesencephalic progenitor cells. Journal of chemical neuroanatomy, 26(2), 133-142.##52- Alireza Abdanipour, Taki Tiraihi. Induction of adipose-derived stem cell into motoneuron-like cells using selegiline as preinducer. Brain Research; 1440, 27 2012, 23–33.##53- Trzaska, K. A., Kuzhikandathil, E. V., & Rameshwar, P. (2007). Specification of a dopaminergic phenotype from adult human mesenchymal stem cells. Stem cells, 25(11), 2797-2808.##54- Sedaghat S. Synthesis and Evaluation of Chitosan–Polyaniline Copolymer in Presence of Ammonium Persulfate as Initiator. J. Pure Appl. Chem. Res.. 2014 Jan 1;8:47-54. Sedaghat S. Synthesis and Evaluation of Chitosan–Polyaniline Copolymer in Presence of Ammonium Persulfate as Initiator. J. Pure Appl. Chem. Res.. 2014 Jan 1;8:47-54.##55- Fatoni A, Numnuam A, Kanatharana P, Limbut W, Thavarungkul P. A conductive porous structured chitosan-grafted polyaniline cryogel for use as a sialic acid biosensor. Electrochimica Acta. 2014 Jun 1;130:296-304.##1- De Lau, L. M., & Breteler, M. M. (2006). Epidemiology of Parkinson's disease. The Lancet Neurology, 5(6), 525-535.##2- Choi, W. S., Palmiter, R. D., & Xia, Z. (2011). Loss of mitochondrial complex I activity potentiates dopamine neuron death induced by microtubule dysfunction in a Parkinson’s disease model. The Journal of cell biology, 192(5), 873-882.##3- Thomas, B., & Beal, M. F. (2011). Molecular insights into Parkinson’s disease. F1000 Med Rep, 3(7).##4- Potashkin, J. A., Blume, S. R., & Runkle, N. K. (2010). Limitations of animal models of Parkinson's disease. Parkinson’s disease, 2011.##5- Bové, J., Prou, D., Perier, C., & Przedborski, S. (2005). Toxin-induced models of Parkinson's disease. NeuroRx, 2(3), 484-494.##6- Kuan, W. L., & Barker, R. A. (2005). New therapeutic approaches to Parkinson’s disease including neural transplants. Neurorehabilitation and neural repair, 19(3), 155-181.##7- Shen, W. B., McDowell, K. A., Siebert, A. A., Clark, S. M., Dugger, N. V., Valentino, K. M., ... & Jafri, M. S. (2010). Environmental neurotoxin‐induced progressive model of parkinsonism in rats. Annals of neurology, 68(1), 70-80.##8- Miller, R. H. (2006). The promise of stem cells for neural repair. Brain research, 1091(1), 258-264.##9- Calzà, L., Giuliani, A., Fernandez, M., Pirondi, S., D'Intino, G., Aloe, L., & Giardino, L. (2003). Neural stem cells and cholinergic neurons: regulation by immunolesion and treatment with mitogens, retinoic acid, and nerve growth factor. Proceedings of the National Academy of Sciences, 100(12), 7325-7330.##10- Ye, M., Wang, X. J., Zhang, Y. H., Lu, G. Q., Liang, L., Xu, J. Y., & Chen, S. D. (2007). Therapeutic effects of differentiated bone marrow stromal cell transplantation on rat models of Parkinson's disease. Parkinsonism & related disorders, 13(1), 44-49.##11- Suon, S., Yang, M., & Iacovitti, L. (2006). Adult human bone marrow stromal spheres express neuronal traits in vitro and in a rat model of Parkinson's disease. Brain research, 1106(1), 46-51.##12- Zuk, P. A., Zhu, M., Ashjian, P., De Ugarte, D. A., Huang, J. I., Mizuno, H., ... & Hedrick, M. H. (2002). Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells. Molecular biology of the cell, 13(12), 4279-4295.##13- Peng J, Wang Y, Zhang L, Zhao B, Zhao Z, Chen J, et al. Human umbilical cord Wharton’s jelly-derived mesenchymal stem cells differentiate into a Schwann cell phenotype and promote neurit outgrowth in vitro. Brain Res Bull. 2011; 84(3): 235-43.##14- Yoo KH, Jang IK, Lee MW, Kim HE, Yang MS, Eom Y, et al. Comparison of immunomodulatory properties of mesenchymal stem cells derived from adult human tissues. Cell Immunol. 2009; 259(2): 150-6.##15- Liang, D., Hsiao, B. S., & Chu, B. (2007). Functional electrospun nanofibrous scaffolds for biomedical applications. Advanced drug delivery reviews, 59(14), 1392-1412.##16- Schmidt, C. E., & Leach, J. B. (2003). Neural tissue engineering: strategies for repair and regeneration. Annual review of biomedical engineering, 5(1), 293-347.##17- Chao, D., Lu, X., Chen, J., Zhao, X., Wang, L., Zhang, W., & Wei, Y. (2006). New method of synthesis of electroactive polyamide with amine‐capped aniline pentamer in the main chain. Journal of Polymer Science Part A: Polymer Chemistry, 44(1), 477-482.##18- Cui, Z., Ni, N. C., Wu, J., Yau, T. M., Weisel, R. D., & Li, R. K. (2015). An Injectable Conductive Polymer Hydrogel Improves Electrical Conduction Velocity in the Injured Heart.##19- Correia, A. S., Anisimov, S. V., Li, J. Y., & Brundin, P. (2005). Stem cell‐based therapy for Parkinson's disease. Annals of medicine, 37(7), 487-498.##20- Kirik, D., Breysse, N., Björklund, T., Besret, L., & Hantraye, P. (2005). Imaging in cell-based therapy for neurodegenerative diseases. European journal of nuclear medicine and molecular imaging, 32(2), S417-S434.##21- Tan, X. F., Jin, G. H., Tian, M. L., Qin, J. B., Zhang, L., Zhu, H. X., & Li, H. M. (2011). The co‐transduction of Nurr1 and Brn4 genes induces the differentiation of neural stem cells into dopaminergic neurons. Cell biology international, 35(12), 1217-1223.##22- Lindvall, O., Kokaia, Z., & Martinez-Serrano, A. (2004). Stem cell therapy for human neurodegenerative disorders–how to make it work.##23- Backlund, E. O., Granberg, P. O., Hamberger, B., Knutsson, E., Mårtensson, A., Sedvall, G., ... & Olson, L. (1985). Transplantation of adrenal medullary tissue to striatum in parkinsonism: first clinical trials. Journal of neurosurgery, 62(2), 169-173.##24- Reubinoff, B. E., Itsykson, P., Turetsky, T., Pera, M. F., Reinhartz, E., Itzik, A., & Ben-Hur, T. (2001). Neural progenitors from human embryonic stem cells. Nature biotechnology, 19(12), 1134-1140.##25- Zhang, S. C., Wernig, M., Duncan, I. D., Brüstle, O., & Thomson, J. A. (2001). In vitro differentiation of transplantable neural precursors from human embryonic stem cells. Nature biotechnology, 19(12), 1129-1133.##26- Li, Y., Chen, J., Wang, L., Zhang, L., Lu, M., & Chopp, M. (2001). Intracerebral transplantation of bone marrow stromal cells in a 1-methyl-4-phenyl-1, 2, 3, 6-tetrahydropyridine mouse model of Parkinson's disease. Neuroscience letters, 316(2), 67-70.##27- Preynat-Seauve, O., Burkhard, P. R., Villard, J., Zingg, W., Ginovart, N., Feki, A., ... & Krause, K. H. (2009). Pluripotent stem cells as new drugs? The example of Parkinson's disease. International journal of pharmaceutics, 381(2), 113-121.##28- Svendsen, C. N., Caldwell, M. A., Shen, J., ter Borg, M. G., Rosser, A. E., Tyers, P., ... & Dunnett, S. B. (1997). Long-term survival of human central nervous system progenitor cells transplanted into a rat model of Parkinson's disease. Experimental neurology, 148(1), 135-146.##29- Danielyan, L., Schäfer, R., von Ameln-Mayerhofer, A., Bernhard, F., Verleysdonk, S., Buadze, M., ... & Koehle, C. (2011). Therapeutic efficacy of intranasally delivered mesenchymal stem cells in a rat model of Parkinson disease. Rejuvenation research, 14(1), 3-16.##30- Hayakawa, H., Hayashita-Kinoh, H., Nihira, T., Seki, T., Mizuno, Y., & Mochizuki, H. (2007). The isolation of neural stem cells from the olfactory bulb of Parkinson's disease model. Neuroscience research, 57(3), 393-398.##31- Murrell, W., Wetzig, A., Donnellan, M., Féron, F., Burne, T., Meedeniya, A., ... & Mackay‐Sim, A. (2008). Olfactory mucosa is a potential source for autologous stem cell therapy for Parkinson's disease. Stem cells, 26(8), 2183-2192.##32- Meredith, G. E., Sonsalla, P. K., & Chesselet, M. F. (2008). Animal models of Parkinson’s disease progression. Acta neuropathologica, 115(4), 385-398.##33- Rauch, F., Schwabe, K., & Krauss, J. K. (2010). Effect of deep brain stimulation in the pedunculopontine nucleus on motor function in the rat 6-hydroxydopamine Parkinson model. Behavioural brain research, 210(1), 46-53.##34- Meredith, G. E., & Kang, U. J. (2006). Behavioral models of Parkinson's disease in rodents: a new look at an old problem. Movement disorders, 21(10), 1595-1606.##35- Schober, A. (2004). Classic toxin-induced animal models of Parkinson’s disease: 6-OHDA and MPTP. Cell and tissue research, 318(1), 215-224.##36- Deumens, R., Blokland, A., & Prickaerts, J. (2002). Modeling Parkinson's disease in rats: an evaluation of 6-OHDA lesions of the nigrostriatal pathway. Experimental neurology, 175(2), 303-317.##37- Wichterle H, Lieberam I, Porter JA, Jessell TM. Directed differentiation of embryonic stem cells into motor neurons. Cell 2002;110:385–397##38- Li XJ. Directed differentiation of ventral spinal progenitors and motor neurons from human embryonic stem cells by small molecules. Stem Cells.2008;26:886–893##39- Lee SK, Lee B, Ruiz EC, Pfaff SL. Olig2 and Ngn2 function in opposition to modulate gene expression in motor neuron progenitor cells. Genes Dev 2005;19:282–294##40- Jiang Y, Lv H, Huang S, Tan H, Zhang Y, Li H. Bone marrow mesenchymal stem cells can improve the motor function of a Huntington's disease rat model. Neurol Res 2011;33(3):331-7##41- Yoshihara, H., Shumsky ,JS., Neuhuber, B., Otsuka ,T., Fischer, I., Murray, M.( 2006)Combining motor training with transplantation of rat bone marrow stromal cells does not improve repair or recovery in rats with thoracic contusion injuries.Brain Res. ;1119(1):65-75##42- Yoshihara H, Shumsky JS, Neuhuber B, Otsuka T, Fischer I, Murray M. Combining motor training with transplantation of rat bone marrow stromal cells does not improve repair or recovery in rats with thoracic contusion injuries. Brain Res 2006 ;1119(1):65-75##43- Prabhakaran, M.P., J. Venugopal, and S. Ramakrishna, Electrospun nanostructured scaffolds for bone tissue engineering. Acta Biomaterialia, 2009. 5(8): p. 2884-2893##44- hin, S., S. Dalton, and S.L. Stice, Human motor neuron differentiation from human embryonic stem cells. Stem cells and development, 2005. 14(3): p. 266-269.##45- Kim, T. E., Lee, H. S., Lee, Y. B., Hong, S. H., Lee, Y. S., Ichinose, H., ... & Lee, M. A. (2003). Sonic hedgehog and FGF8 collaborate to induce dopaminergic phenotypes in the Nurr1-overexpressing neural stem cell. Biochemical and biophysical research communications, 305(4), 1040-1048.##46- Fu, Y. S., Cheng, Y. C., Lin, M. Y. A., Cheng, H., Chu, P. M., Chou, S. C., ... & Sung, M. S. (2006). Conversion of human umbilical cord mesenchymal stem cells in Wharton's jelly to dopaminergic neurons in vitro: potential therapeutic application for Parkinsonism. Stem cells, 24(1), 115-124.##47- Roy, N. S., Cleren, C., Singh, S. K., Yang, L., Beal, M. F., & Goldman, S. A. (2006). Functional engraftment of human ES cell–derived dopaminergic neurons enriched by coculture with telomerase-immortalized midbrain astrocytes. Nature medicine, 12(11), 1259-1268.##48- Takagi, Y., Takahashi, J., Saiki, H., Morizane, A., Hayashi, T., Kishi, Y., ... & Hayashi, H. (2005). Dopaminergic neurons generated from monkey embryonic stem cells function in a Parkinson primate model. The Journal of clinical investigation, 115(1), 102-109.##49- Eisch, A. J., Cameron, H. A., Encinas, J. M., Meltzer, L. A., Ming, G. L., & Overstreet-Wadiche, L. S. (2008). Adult neurogenesis, mental health, and mental illness: hope or hype?. Journal of Neuroscience, 28(46), 11785-11791.##50- Ling, Z. D., Potter, E. D., Lipton, J. W., & Carvey, P. M. (1998). Differentiation of mesencephalic progenitor cells into dopaminergic neurons by cytokines. Experimental neurology, 149(2), 411-423.##51- Storch, A., Lester, H. A., Boehm, B. O., & Schwarz, J. (2003). Functional characterization of dopaminergic neurons derived from rodent mesencephalic progenitor cells. Journal of chemical neuroanatomy, 26(2), 133-142.##52- Alireza Abdanipour, Taki Tiraihi. Induction of adipose-derived stem cell into motoneuron-like cells using selegiline as preinducer. Brain Research; 1440, 27 2012, 23–33.##53- Trzaska, K. A., Kuzhikandathil, E. V., & Rameshwar, P. (2007). Specification of a dopaminergic phenotype from adult human mesenchymal stem cells. Stem cells, 25(11), 2797-2808.##54- Sedaghat S. Synthesis and Evaluation of Chitosan–Polyaniline Copolymer in Presence of Ammonium Persulfate as Initiator. J. Pure Appl. Chem. Res.. 2014 Jan 1;8:47-54. Sedaghat S. Synthesis and Evaluation of Chitosan–Polyaniline Copolymer in Presence of Ammonium Persulfate as Initiator. J. Pure Appl. Chem. Res.. 2014 Jan 1;8:47-54.##55- Fatoni A, Numnuam A, Kanatharana P, Limbut W, Thavarungkul P. A conductive porous structured chitosan-grafted polyaniline cryogel for use as a sialic acid biosensor. Electrochimica Acta. 2014 Jun 1;130:296-304. ##

Evaluating the relationship between the rs12252 single nucleotide polymorphisms of Interferon-Induced Transmembrane Protein 3 (IFITM3) gene as host genetic factors in controlling COVID-19 infection بررسی ارتباط بین پلی مورفیسم تک نوکلئوتیدی rs12252 ژن Interferon-Induced Transmembrane Protein 3 (IFITM3) به عنوان فاکتورهای ژنتیکی میزبان در کنترل عفونت COVID-19 2 1 همه گیری عفونت COVID-19 امروزه به سرعت در حال افزایش و میزان مرگ و میر ناشی از این عفونت بطور روزمره در حال افزایش می باشد. الگوی مرگ و میر در بیماران مختلف با و یا بدون بیماری زمینه ای کاملا" متفاوت می باشد. علت تفاوت در مرگ و میر را می توان به ژنتیک میزبان مرتبط دانست. امروزه پلی مورفیسم های تک نوکلئوتیدی مربوط به میزبان در بسیاری از عفونت های ویروسی به عنوان یک فاکتور therapeutic و یا پیش بینی کننده درمان مد نظر می باشد. از جمله این فاکتورها می توان به SNPهای ژن IFITM3 اشاره کرد. حضور برخی از ژنوتایپ های این پلی مورفیسم ها تعیین کننده شدت بیماری هستند. در مورد برخی دیگر از عفونت های ویروسی این پلی مورفیسم ها هم اثرات تعیین کننده ای از خود نشان داده اند. در مورد ویروس SARS-CoV-2 تاکنون ارتباط این پلی مورفیسم ها با پیشرفت یا کاهش عفونت زایی ویروس در ایران مورد مطالعه قرار نگرفته است. شاید در آینده تعیین این پلی مورفیسم ها بتواند نقش بسیار مهمی در کنترل عفونت ویروس داشته باشند لذا انجام این تحقیق به عنوان یک مطالعه اولیه می تواند در ارتباط ویروس با ژنتیک میزبان مفید و حائز اهمیت باشد. 2 In the span of the COVID-19 pandemic, the number of deaths due to the severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) infection has been increasing in a daily fashion. Morbidity and mortality among patients with or without comorbidities also suffering from COVID-19, demonstrates marked pattern variation. Such different patterns can be traced back to the genetic makeup of the host. Presently, single nucleotide polymorphisms (SNPs) found in the genetic framework of the host, can be used to assign therapeutic approach or characterise the prognosis of many different viral infections. One SNP of note is IFITM3, certain genotypes of which can predict disease severity. These SNPs have a determinant influence on the natural history of many viral infections. To date, the impact of these SNPs on the progression or control of the SARS-CoV-2 infection has not been studied in Iran. Specification of these SNPs in the Iranian population may introduce new means of viral infection control. Therefore, this study may provide the preliminary basis of the correlation between the genetic character of the host and viral infection. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/142017/08/202017/10/72018/12/312019/05/122020/04/42020/10/262020/12/22021/08/2 1400/5/11 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/162017/10/242017/10/242019/03/12019/08/272020/06/162021/02/12021/02/142021/08/29 1400/6/7 ایرج احمدی Iraj Ahmadi گروه آموزشی فیزیولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران ahmadiiraj96@gmail.com عنایت انوری Enayat Anvari گروه آموزشی فیزیولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران anvari_ph@yahoo.com علیرضا عفیفی پور Alireza Afifipour دانشکده پزشکی ایران alirezaafifipour@gmail.com ابوالفضل فاتح Abolfazl Fateh ایران afateh2@gmail.com معصومه اسدی Masoumeh Asadi ایران masoumeh.asadi64@yahoo.com single nucleotide polymorphism SNP interferon-induced transmembrane protein 3 IFITM3 COVID-19 SARS-CoV-2 پلی مورفیسم تک نوکلئوتیدی فاکتورهای ژنتیکی میزبان کنترل عفونت 1. Wang C, Horby PW, Hayden FG, Gao GF. A novel coronavirus outbreak of global health concern. The Lancet. 2020;395(10223):470-3.##2. Gorbalenya A, Baker S, Baric R, de Groot R, Drosten C, Gulyaeva A, et al. The species severe acute respiratory syndrome related coronavirus: classifying 2019-nCoV and naming it SARS-CoV-2. Nat Microbiol 5: 536–544. 2020.##3. Kim J-M, Chung Y-S, Jo HJ, Lee N-J, Kim MS, Woo SH, et al. Identification of Coronavirus Isolated from a Patient in Korea with COVID-19. Osong public health and research perspectives. 2020;11(1):3.##4. Shin MD, Shukla S, Chung YH, Beiss V, Chan SK, Ortega-Rivera OA, et al. COVID-19 vaccine development and a potential nanomaterial path forward. Nature Nanotechnology. 2020:1-10.##5. Day M. Covid-19: four fifths of cases are asymptomatic, China figures indicate. British Medical Journal Publishing Group; 2020.##6. Sutton D, Fuchs K, D’alton M, Goffman D. Universal screening for SARS-CoV-2 in women admitted for delivery. New England Journal of Medicine. 2020;382, 2163-2164. ##7. Plante JA, Liu Y, Liu J, Xia H, Johnson BA, Lokugamage KG, et al. Spike mutation D614G alters SARS-CoV-2 fitness. Nature. 2020:1-9.##8. Tang X, Wu C, Li X, Song Y, Yao X, Wu X, et al. On the origin and continuing evolution of SARS-CoV-2. National Science Review. 2020.##9. Brawner CA, Ehrman JK, Bole S, Kerrigan DJ, Parikh SS, Lewis BK, et al., editors. Maximal Exercise Capacity is Inversely Related to Hospitalization Secondary to Coronavirus Disease 2019. Mayo Clinic Proceedings; 2020: Elsevier.##10. Grundy EJ, Suddek T, Filippidis FT, Majeed A, Coronini-Cronberg S. Smoking, SARS-CoV-2 and COVID-19: A review of reviews considering implications for public health policy and practice. Tobacco induced diseases. 2020;18.##11. Guo X, Chen Z, Xia Y, Lin W, Li H. Investigation of the genetic variation in ACE2 on the structural recognition by the novel coronavirus (SARS-CoV-2). 2020.##12. Devaux CA, Rolain J-M, Raoult D. ACE2 receptor polymorphism: Susceptibility to SARS-CoV-2, hypertension, multi-organfailure, and COVID-19 disease outcome. Journal of Microbiology, Immunology and Infection. 2020.##13. Nogales A, L DeDiego M. Host single nucleotide polymorphisms modulating influenza A virus disease in humans. Pathogens. 2019;8(4):168.##14. Singh KK, Spector SA. Host genetic determinants of human immunodeficiency virus infection and disease progression in children. Pediatric research. 2009;65(7):55-63.##15. Zhang Z, Wang C, Liu Z, Zou G, Li J, Lu M. Host genetic determinants of hepatitis B virus infection. Frontiers in genetics. 2019;10:696.##16. McMichael, T.M., Chemudupati, M. & Yount, J.S. A balancing act between IFITM3 and IRF3. Cell Mol Immunol, 2018; 873–874 .##17. Alghamdi J, Alaamery M, Barhoumi T, Rashid M, Alajmi H, Aljasser N, Alhendi Y, et al. Interferon-induced transmembrane protein-3 genetic variant rs12252 is associated with COVID-19 mortality. Genomics. 2021 Jul;113(4):1733-1741. ##18. Schönfelder K, Breuckmann K, Elsner C, Dittmer U, Fistera D, Herbstreit F, et al. The influence of IFITM3 polymorphisms on susceptibility to SARS-CoV-2 infection and severity of COVID-19. Cytokine. 2021 Jun;142:155492.##19. Zhang Y, Qin L, Zhao Y, Zhang P, Xu B, Li K, et al. Interferon-Induced Transmembrane Protein 3 Genetic Variant rs12252-C Associated With Disease Severity in Coronavirus Disease 2019. J Infect Dis. 2020 Jun 16;222(1):34-37.##1. Wang C, Horby PW, Hayden FG, Gao GF. A novel coronavirus outbreak of global health concern. The Lancet. 2020;395(10223):470-3.##2. Gorbalenya A, Baker S, Baric R, de Groot R, Drosten C, Gulyaeva A, et al. The species severe acute respiratory syndrome related coronavirus: classifying 2019-nCoV and naming it SARS-CoV-2. Nat Microbiol 5: 536–544. 2020.##3. Kim J-M, Chung Y-S, Jo HJ, Lee N-J, Kim MS, Woo SH, et al. Identification of Coronavirus Isolated from a Patient in Korea with COVID-19. Osong public health and research perspectives. 2020;11(1):3.##4. Shin MD, Shukla S, Chung YH, Beiss V, Chan SK, Ortega-Rivera OA, et al. COVID-19 vaccine development and a potential nanomaterial path forward. Nature Nanotechnology. 2020:1-10.##5. Day M. Covid-19: four fifths of cases are asymptomatic, China figures indicate. British Medical Journal Publishing Group; 2020.##6. Sutton D, Fuchs K, D’alton M, Goffman D. Universal screening for SARS-CoV-2 in women admitted for delivery. New England Journal of Medicine. 2020;382, 2163-2164. ##7. Plante JA, Liu Y, Liu J, Xia H, Johnson BA, Lokugamage KG, et al. Spike mutation D614G alters SARS-CoV-2 fitness. Nature. 2020:1-9.##8. Tang X, Wu C, Li X, Song Y, Yao X, Wu X, et al. On the origin and continuing evolution of SARS-CoV-2. National Science Review. 2020.##9. Brawner CA, Ehrman JK, Bole S, Kerrigan DJ, Parikh SS, Lewis BK, et al., editors. Maximal Exercise Capacity is Inversely Related to Hospitalization Secondary to Coronavirus Disease 2019. Mayo Clinic Proceedings; 2020: Elsevier.##10. Grundy EJ, Suddek T, Filippidis FT, Majeed A, Coronini-Cronberg S. Smoking, SARS-CoV-2 and COVID-19: A review of reviews considering implications for public health policy and practice. Tobacco induced diseases. 2020;18.##11. Guo X, Chen Z, Xia Y, Lin W, Li H. Investigation of the genetic variation in ACE2 on the structural recognition by the novel coronavirus (SARS-CoV-2). 2020.##12. Devaux CA, Rolain J-M, Raoult D. ACE2 receptor polymorphism: Susceptibility to SARS-CoV-2, hypertension, multi-organfailure, and COVID-19 disease outcome. Journal of Microbiology, Immunology and Infection. 2020.##13. Nogales A, L DeDiego M. Host single nucleotide polymorphisms modulating influenza A virus disease in humans. Pathogens. 2019;8(4):168.##14. Singh KK, Spector SA. Host genetic determinants of human immunodeficiency virus infection and disease progression in children. Pediatric research. 2009;65(7):55-63.##15. Zhang Z, Wang C, Liu Z, Zou G, Li J, Lu M. Host genetic determinants of hepatitis B virus infection. Frontiers in genetics. 2019;10:696.##16. McMichael, T.M., Chemudupati, M. & Yount, J.S. A balancing act between IFITM3 and IRF3. Cell Mol Immunol, 2018; 873–874 .##17. Alghamdi J, Alaamery M, Barhoumi T, Rashid M, Alajmi H, Aljasser N, Alhendi Y, et al. Interferon-induced transmembrane protein-3 genetic variant rs12252 is associated with COVID-19 mortality. Genomics. 2021 Jul;113(4):1733-1741. ##18. Schönfelder K, Breuckmann K, Elsner C, Dittmer U, Fistera D, Herbstreit F, et al. The influence of IFITM3 polymorphisms on susceptibility to SARS-CoV-2 infection and severity of COVID-19. Cytokine. 2021 Jun;142:155492.##19. Zhang Y, Qin L, Zhao Y, Zhang P, Xu B, Li K, et al. Interferon-Induced Transmembrane Protein 3 Genetic Variant rs12252-C Associated With Disease Severity in Coronavirus Disease 2019. J Infect Dis. 2020 Jun 16;222(1):34-37. ##

Investigation of epidemiological features of brucellosis in Iran: A systematic review and meta-analysis study بررسی ویژگی های اپیدمیولوژیک برسلوز در ایران: مطالعه مرور سیستماتیک و متاآنالیز 2 1 بیماری بروسلوز در تمام نقاط دنیا به جز مناطقی که بروسلوز گاوی ریشه کن شده است اتفاق میافتد. سالانه 500هزار مورد جدید عمدتاً در کشورهای مدیترانهای، آسیای مرکزی، شبه جزیره عربستان، هند و آمریکای لاتین گزارش میشود. در تمام نقاط ایران بروسلوز اندمیک بوده و هنوز هم به عنوان یک معضل در حوزه سلامت به شمار میرود. ایران با میانگین بروز 43/24 در صد هزار نفر در رده چهارم دنیا قرار دارد. به دلیل مرزهای طولانی کشور و عدم نظارت بر واردات دامها، تعداد زیاد جمعیت عشایری، روشهای سنتی دامداری، عدم نظارت کافی بر تولید و توزیع محصولات لبنی و عدم اجرای منظم واکسیناسیون و آزمایش و کشتار دامها، موارد زیاد بیماری در کشور گزارش شده است. در مطالعات انجام شده در نقاط مختلف ایران شیوع بروسلوز در کازرون 7/8درصد، بوشهر 10/8درصد، کرمان 3/2درصد31/2درصد ، اصفهان ، گیلان (مناطق روستایی) 9/8درصد، مازندران 53/9 درصد و عشایر کل کشور 29/5درصد گزارش شد. به رغم اهمیت بیماری و صورت های متفاوت ظهور نشانه ها و علایم آن، تاکنون مطالعه جامعی در زمینه علایم و نشانه های متفاوت بیماری در دسترس نیست. از این رو این مطالعه انجام گردید تا بتوان در یک مرور ساختارمند علایم و نشانه های متفاوت بیماری در مبتلایان در سطح کشور را بررسی نمود و بتوان به کمک آن از فراوانی هر کدام از این نشانه ها و علایم در افراد مبتلا در سطح کشور اطلاع یافته و دید کلی تری نسبت به تظاهرات این بیماری هزار چهره پیدا کنیم. این امر در نهایت منجر به تسریع روند تشخیصی شده و بیماران میتوانند در زمان کوتاه تری به درمان مناسب دست پیدا کنند. 2 Brucellosis occurs in all parts of the world except in areas where bovine brucellosis has been eradicated. Annually, 500,000 new cases are reported, mainly in the Mediterranean, Central Asia, the Arabian Peninsula, India and Latin America. Brucellosis is endemic in all parts of Iran and is still considered a health problem. Iran ranks fourth in the world with an average incidence of 24.43 per 100,000 people. Due to the long borders of the country and lack of supervision over the import of livestock, large number of nomadic population, traditional methods of animal husbandry, insufficient supervision over the production and distribution of dairy products and lack of regular vaccination and testing and killing of livestock, many cases have been reported.In studies conducted in different parts of Iran, the prevalence of brucellosis in Kazerun is 8.7%, Bushehr 8.10%, Kerman 2.3% 2.31%, Isfahan, Gilan (rural areas) 8.9%, Mazandaran 9.53% and all tribes in the country 5% were reported. Despite the importance of the disease and the different forms of the appearance of its signs and symptoms, a comprehensive study on the different signs and symptoms of the disease is not yet available. Therefore, this study was conducted in order to examine the different signs and symptoms of the disease in patients across the country in a structured review and to find out the frequency of each of these signs and symptoms in patients across the country. And letchr('39')s find a more general view of the manifestations of this disease of a thousand faces. This ultimately speeds up the diagnostic process and patients can achieve appropriate treatment in a shorter time 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/142017/08/202017/10/72018/12/312019/05/122020/04/42020/10/262020/12/22021/08/22021/06/7 1400/3/17 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/162017/10/242017/10/242019/03/12019/08/272020/06/162021/02/12021/02/142021/08/292021/09/5 1400/6/14 سعید خشنود saeed khoshnood مرکزتحقیقات میکروب شناسی بالینی ایران saeed.khoshnood22@gmail.com نورخدا صادقی فرد Nourkhoda Sadeghifard مرکز تحقیقات میکروب شناسی بالینی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران sadeghifard@gmail.com محسن حیدری mohsen hydari گروه میکروب شناسی بالینی ایران mohsenheidary40@gmail.com ملیکا مرادی melika moradi گروه میکروب شناسی ایران m.melikamoradi@gmail.com الماس عراقی almas Iraqi گروه میکروب شناسی ایران almasaraghi@yahoo.com گلناز ایرانی golnaz irani گروه میکروب شناسی بالینی ایران g.irani5728@yahoo.com رضا پاکزاد Reza Pakzad گروه اپیدمیولوژی ایران rezapakzad2010@yahoo.com Brucella epidemiological features meta-analysis بروسلا ویژگی اپیدمیولوژیک متاآنالیز Sofian, M., et al., Risk factors for human brucellosis in Iran: a case-control study. Int J Infect Dis,##2008. 12(2): p. 157-61.##2. Malani, P.N., Mandell, Douglas, and Bennett’s principles and practice of infectious diseases.##JAMA, 2010. 304(18): p. 1240,2921.##3. Bahonar, A.R. and Z. M., Malta Fever (Brucellosis), in Epidemiology Textbook of Prevalent##Diseases in Iran, S. H. and A. H., Editors. 2013, GAP Publishing: Tehran. p. 161-170.##4. Kolahi, A., Malta Fever, in Epidemiology and Control of Common Diseases in Iran, A. T. and A.##M., Editors. 2011, Khosravi Publishing: Tehran. p. 665-672.##5. Crump, J.A., et al., Estimating the incidence of typhoid fever and other febrile illnesses in##developing countries. Emerging infectious diseases, 2003. 9(5): p. 539-544.##6.Roux J. Public health importance of brucellosis. In: Ttimbay E, Hilmi S, Ang 0, editors. Brucella and brucellosis in man and animals. Yzmir: Ege University Press. 1991;3-10.##7. Pappas G, Papadimitriou P, Akritidis N, Christov L, Tsianos EV. The new global map of human brucellosis. Lancet Infect Dis. 2006;6(2):91-9.##8. Hashemi Tabar GR, Jafari A. Preventive and Control Programs for Brucellosis in Human and Animals. J Zoonoses. 2014;1(1):1-17. ##9. Mostafavi E, Asmand M. Trend of Brucellosis in Iran from 1991 to 2008. irje. 2012;8(1):94-101.##10. Sofan M, Aghakhani A, Velayati A, Banifazl M, Eslamifar A, Ramezani A. Risk factors for human brucellosis in Iran: a casecontrol study. Int J Infect Dis. 2008;12(2):157-61.##11. Smits HL, Kadri SM. Brucellosis in India: a deceptive infectious disease. Indian J Med Sci. 2005;122(5):375-84.##12. Rotz LD, Khan AS, Lillibridge SR, Ostroff SM, Hughes JM. Public health assessment of potential biological terrorism agents. Emerg Infect Dis. 2002;8(2):225-30. ##13. Heymann Dl. Control of Communicable Diseases Manual: an offcial report of the American public health association. Tehran: 2004; 82-5.##14. Azizi F, Janghorbani M, Hatami H. [Epidemiology and control of common diseases in Iran]. Tehran: Khosravi. 2006; 665-70. [Persian]##15. Gooya MM, Tabatabaei SM, Zahraei M, Ahmadnia H, Ghotbi M, Rahimi F. [Principles of prevention and surveillance from diseases]. Tehran: Roohe Ghalam. 2006; 173-6.[Persian].##16. HasanjaniRoushan MR, Mohrez M, SmailnejadGangi.SM, SoleimaniAmiri J, Hajiahmadi M. Epidemiological features and clinical manifestations in 469 adult patients with brucellosis in Babol, Northern Iran. Epidemiol Infect.2004;132(6):1109-14.##17. Akbarmehr J, Ghiyamirad M. Serological survey of brucellosis in livestock animals in Sarab City (East Azarbayjan province), Iran. Afr J Microbiol Res. 2011;5(10):1220-3.##18. Karimi A, Alborzi A, Rasooli M, Kadivar MR, Nateghian AR. Prevalence of antibody to Brucella species in butchers, slaughterers and others. East Mediterr Health J. 2003;9(1- 2):178-84.##19. Beheshti S, Rezaian GR, Azad F, Faghiri Z, Taheri F. Seroprevalence of brucellosis and risk factors related to highrisk occupational groups in Kazeroon, South of Iran. Int J Occup Environ Med. 2010;1(2):62-8.##20. E. Alp, M. Doganay, Current therapeutic strategy in spinal brucellosis, Int. J. Infect. Dis. 12 (2008) 573e577.##21. J.M. Blasco, B. Molina-Flores, Control and eradication of Brucella melitensis infection in sheep and goats, Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 27 (2011) 95e104.##22. R. Mirnejad, R.H. Doust, R. Kachuei, S.M. Mortazavi, M. Khoobdel, A. Ahamadi, Simultaneous detection and differentiates of Brucella abortus and Brucella melitensis by combinatorial PCR, Asian Pac J. Trop. Med. 5 (2012) 24e28.##23. A. Karimi, M.R. Kadivar, M. Fararoee, A. Alborzi, Active case-finding of communicable diseases in the south of the Islamic Republic of Iran, East Mediterr. Health J. 6 (2000) 487e493.##24. S. Dames, C. Tonnerre, S. Saint, S.R. Jones, Don't know much about history, New Eng. J. Med. 352 (2005) 2338e2342.##25. B.G. Mantur, M.S. Biradar, R.C. Bidri, M.S. Mulimani, K. Veerappa, P. Kariholu, et al., Protean clinical manifestations and diagnostic challenges of human brucellosis in adults: 16 years' experience in an endemic area, J. Med. Microbiol. 55 (2006) 897e903.##26. Mirnejad R, Jazi FM, Mostafaei S, Sedighi M. Epidemiology of brucellosis in Iran: A comprehensive systematic review and meta-analysis study. Microbial pathogenesis. 2017 Aug 1;109: 239-47.##27. R. Ramazanzadeh, R. McNerney, Variable number of tandem repeats (VNTR) and its application in bacterial epidemiology, Pak J. Biol. Sci. 10 (2007) 2612e2621.##28. H. Kassiri, H. Amani, M. Lotfi, S. Hossieni, Epidemiological aspects of human brucellosis in Azna county, Lorestan province, west of Iran, Jenta J. Health Res. 2011 (1) (2007-2008) 1e9 (In Persian (##29. Dastjerdi MZ, Nobari RF, Ramazanpour J. Epidemiological features of human brucellosis in central Iran, 2006–2011. Public health. 2012 Dec 1;126(12):1058-62.##30. Sayyad S, Malak Mohammadi M, Miri B, Gharib A, Sayyadi M, Vahabi A. The prevalence rate of human brucellosis in Sanandaj County, West of Iran. Life Science Journal. 2014;11(SPEC.):23-5.##31. AA Haghdoost, L Kawaguchi, A Mirzazadeh, H Rashidi, A Sarafinejad, AR Baniasadi, C Davies. Using GIS in Explaining Spatial Distribution of Brucellosis in an Endemic District in Iran. Iran J Public Health. 36(1):27-34.##32. Hasanzadeh A, Rahimi I, Shakerian A. Survey of epidemiology brucellosis in Mobarakeh, Esfahan from 2003 to 2010. Bull Env Pharmacol Life Sci. 2013 Nov;2(12):87-90.##33. Maleki F, RafieManesh H, Abbasi-Ghahramanloo A, Ghadimi N, Kousha A, Safiri S. Epidemiological characteristics of human brucellosis in Shahin Dezh, western Azarbaijan, Iran, 2008-2012. Archives of Clinical Infectious Diseases. 2015 Jan 31;10(1). ##34. M.H. Mosavi, N.E.M. Shavisi, Epidemiological features survey of Malta fever in Gylangharb city, Kermanshah province, J. Zoonotic Dis. 1 (2014) 1e8 (In Persian).##- ##

Study the Prevalence of Suicidal Ideation and Suicidal Attempt during the COVID-19 pandemic: A Systematic Review and Meta-Analysis Study بررسی شیوع ایده خودکشی و اقدام خودکشی طی بیماری همه گیر COVID-19: به روش مرور منظم و متاانالیز 2 1 ویروس کرونا ویروس 2019 (COVID-19) یک بیماری عفونی جدید است که در اواخر سال 2019 در ووهان ، چین ظهور کرد و به سرعت در سراسر جهان گسترش یافت. همه گیری COVID-19 به طور جدی بر زندگی روزمره مردم سراسر جهان ، از جمله سلامت ، رفاه اقتصادی و تعاملات اجتماعی آنها تأثیر می گذارد. اپیدمی بیماری های واگیر ، به عنوان یک عامل اصلی فشارزا در زندگی در افراد و افراد اطراف ، می تواند تأثیرات زیادی بر سلامت روان داشته باشد. پیش بینی ناپذیری و عدم اطمینان از بیماری همه گیر COVID-19 ، ترس از عفونت و تغییرات محیطی مربوط به COVID-19 عوامل اصلی استرس زا هستند که باعث ایجاد مشکلات بهداشت روان می شوند. و برخی از عوامل ، از جمله آسیب اقتصادی اقتصادی ، حمایت اجتماعی ، افزایش فشار و بیکاری ، ممکن است با رفتارهای خودکشی مرتبط باشد. رفتارهای خودکشی چند عاملی است و شامل تعاملات پیچیده ای بین عوامل بیولوژیکی و محیطی است. در میان آنها ، یک عامل اصلی خطر در علت ایده پردازی خودکشی ، یک فشار روانی زندگی نامطلوب است. گزارش های اولیه موج خودکشی در چندین مطالعه در مراحل مختلف شیوع همه گیری گزارش شده است به عنوان یک بحران جدی شدید ، ایده های خودکشی و عوامل وابسته در جمعیت عمومی باید به طور سیستماتیک بررسی شود. 2 Corona Virus 2019 (COVID-19) is a new infectious disease that emerged in late 2019 in Wuhan, China and spread rapidly around the world. The COVID-19 epidemic is seriously affecting the daily lives of people around the world, including their health, economic well-being and social interactions. An epidemic of infectious diseases, as a major stressors in the lives of people and people around, can have many effects on mental health. Unpredictability and uncertainty about the COVID-19 pandemic, fear of infection and COVID-19-related environmental changes are the main stressors that cause mental health problems. And some factors, including economic hardship, social support, increased stress, and unemployment, may be associated with suicidal behaviors. Suicidal behaviors are multifactorial and involve complex interactions between biological and environmental factors. Among them, a major risk factor for suicidal ideation is a stressful life. Preliminary reports of a suicide wave have been reported in several studies at different stages of the epidemic As a severe crisis, suicidal ideation and related factors in the general population must be systematically examined. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/142017/08/202017/10/72018/12/312019/05/122020/04/42020/10/262020/12/22021/08/22021/06/72021/06/25 1400/4/4 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/162017/10/242017/10/242019/03/12019/08/272020/06/162021/02/12021/02/142021/08/292021/09/52021/09/15 1400/6/24 سمیرا ترده Samira Tardeh دانشگاه علوم پزشکی ایران s.tardeh1999@gmail.com امیر ادیبی Amir Adibi گروه آموزشی روانپزشکی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران amir771155@yahoo.com علی اشرف مظفری Ali Ashraf Mozafari دانشگاه علوم پزشکی ایران s.tardeh1999@gmail.com Suicidal Ideation Suicidal Attempt COVID-19 تفکر خودکشی اقدام خودکشی کووید19 1)Wang, C.; Horby, P.W.; Hayden, F.G.; Gao, G.F. A novel coronavirus outbreak of global health concern.Lancet2020,395, 470–473.##2)Chakraborty, I.; Maity, P. COVID-19 outbreak: Migration, effects on society, global environment andprevention.Sci. Total Environ.2020,728, 138882##3)an A, Liu L, Wang C, Guo H, Hao X, Wang Q, et al. Association of publichealth interventions with the epidemiology of the COVID-19 outbreak inWuhan, China. JAMA. 2020;323:1915–23.##4)Kramer A, Kramer KZ. The potential impact of the COVID-19 pandemicon occupational status, work from home, and occupational mobility. JVocat Behav. 2020;119:103442.##1)Wang, C.; Horby, P.W.; Hayden, F.G.; Gao, G.F. A novel coronavirus outbreak of global health concern.Lancet2020,395, 470–473.##2)Chakraborty, I.; Maity, P. COVID-19 outbreak: Migration, effects on society, global environment andprevention.Sci. Total Environ.2020,728, 138882##3)an A, Liu L, Wang C, Guo H, Hao X, Wang Q, et al. Association of publichealth interventions with the epidemiology of the COVID-19 outbreak inWuhan, China. JAMA. 2020;323:1915–23.##4)Kramer A, Kramer KZ. The potential impact of the COVID-19 pandemicon occupational status, work from home, and occupational mobility. JVocat Behav. 2020;119:103442. ##

Determination of Toxoplasma gondii Tyrosine-rich oocyst wall protein by computer methods تعیین پروتئین غنی از تیروزین دیواره اووسیست توکسوپلاسما گوندی با روش‌ های کامپیوتری 2 1 توکسوپلاسموز ناشی از تک یاخته توکسوپلاسما گوندی تهدیدی جهانی با اهمیت زئونوز است. این انگل دارای دو میزبان نهایی (گربه سانان) و واسط (طیف وسیعی از حیوانات خونگرم) می باشد. مهم ترین عارضه انگل سقط جنین در زنان باردار و نیز دام های اهلی مانند گوسفند و خوک است، گرچه در افراد دچار ضعف سیستم ایمنی بیماری به صورت التهاب ریوی (پنومونی) و یا مغزی (انسفالیت) بروز پیدا می کند. انگل دارای سه فرم بیماریزا برای انسان است که هریک در اپیدمیولوژی و انتقال بیماری نقش عمدهای ایفا میکنند: اووسیست (آب و غذای آلوده)، تاکی زوآیت (انتقال مادرزادی یا از طریق خون) و برادی زوآیت (انتقال از طریق اهدای عضو یا محصولات گوشتی آلوده به کیست های بافتی). بیش از 30 سال از مطالعات واکسیناسیون توکسوپلاسما می گذرد اما هنوز واکسن تجاری برای انسان به مرحله تولید نرسیده است. واکسن های کشته یا تخفیف حدت یافته به لحاظ مسائل ایمنی برای انسان و یا قدرت ایمنی زایی در بدن امروزه چندان مورد توجه نبوده، اما از طرفی واکسن های زیرواحدی مورد توجه پژوهش گران می باشند. از این دسته واکسن ها می توان به DNA واکسن ها یا واکسن های پروتئینی اشاره نمود که غالباً همراه با یک ادجوانت یا یاور قادر به تولید پاسخ ایمنی مناسب علیه انگل می باشند. در این مسیر ، آنتی ژن های بسیاری از مراحل مختلف زندگی انگل جهت ارزیابی قابلیت ایمنیزایی مورد شناسایی و بررسی قرار گرفته اند که از این جمله می توان به آنتی ژن های سطحی (SAGs)، و آنتی ژن های اندامکی در تاکی زوآیت و برادی زوآیت مانند میکرونم (MIC)، روپتری (ROP) و گرانول های متراکم (GRA) اشاره نمود. نظر به این که تابحال مطالعات کمتری بر روی آنتی ژنهای مربوط به دیواره اووسیستی انگل صورت گرفته است، برآن شدیم تا مطالعه بیوانفورماتیک حاضر را بر روی آنتی ژن غنی از تیروزین دیواره اووسیست توکسوپلاسما گوندی TrOWP انجام دهیم. 2 Toxoplasmosis due to Toxoplasma gondii is a global threat with significant zoonosis. This parasite has two final hosts (cats) and intermediates (a wide range of warm-blooded animals). The most important complication of abortion parasites in pregnant women and domestic animals such as sheep and pigs, although in people with weakened immune system the disease occurs in the form of pneumonia (pneumonia) or brain (encephalitis). The parasite has three pathogenic forms for humans, each of which plays a major role in the epidemiology and transmission of the disease: oocysts (contaminated water and food), tachyzoites (congenital or through blood transfusions), and bradycosites (transmission through organ donation or meat products). (Infected with tissue cysts). More than 30 years have passed since the Toxoplasma vaccine study, but the commercial vaccine for humans has not yet reached the production stage. Killed or attenuated vaccines have not received much attention today in terms of human immunity or immunizing power in the body, but on the other hand, subunit vaccines are of interest to researchers. These vaccines include DNA vaccines or protein vaccines, which often work together with an adjuvant or helper to produce an appropriate immune response against the parasite. In this way, antigens from many different stages of the parasite's life have been identified and evaluated to assess immunization, including surface antigens (SAGs), and organ antigens in tachyzoites and brady zoites such as microns (MICs). , ROP (Dop) and Dense Granules (GRA). Since fewer studies have been performed on parasites related to the parasite oocyte wall, we decided to conduct the present bioinformatics study on Toxoplasma gondii oocyte tyrosine-rich antigen (TrOWP). 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/142017/08/202017/10/72018/12/312019/05/122020/04/42020/10/262020/12/22021/08/22021/06/72021/06/252021/06/9 1400/3/19 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/162017/10/242017/10/242019/03/12019/08/272020/06/162021/02/12021/02/142021/08/292021/09/52021/09/152021/11/20 1400/8/29 مرتضی شمس Morteza Shams مرکز تحقیقات بیماری‌های مشترک انسان و دام، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران shamsimorteza55@gmail.com راضی ناصری فر Razi Naserifar مرکز تحقیقات بیماری‌های مشترک انسان و دام، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران razinaserifar@yahoo.com حمیدرضا مجیدیانی Hamidreza Majidiani دانشکده علوم پزشکی نیشابور ایران Hamidreza.majidiani@gmail.com Toxoplasma gondii oocyst protein Tyrosine توکسوپلاسما گوندی اووسیست پروتئین تیروزین 1. McLeod R, Cohen W, Dovgin S, Finkelstein L, Boyer KM. Human toxoplasma infection. Toxoplasma gondii: Elsevier; 2020. p. 117-227.##2. Khan AH, Noordin R. Serological and molecular rapid diagnostic tests for Toxoplasma infection in humans and animals. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 2020;39(1):19-30.##3. Nayeri T, Sarvi S, Moosazadeh M, Daryani A. Global prevalence of Toxoplasma gondii infection in the aborted fetuses and ruminants that had an abortion: A systematic review and meta-analysis. Veterinary Parasitology. 2021:109370.##4. Hatam-Nahavandi K, Calero-Bernal R, Rahimi MT, Pagheh AS, Zarean M, Dezhkam A, et al. Toxoplasma gondii infection in domestic and wild felids as public health concerns: a systematic review and meta-analysis. Scientific Reports. 2021;11(1):9509.##5. Asghari A, Shamsinia S, Majidiani H, Fatollahzadeh M, Nemati T, Irannejad H, et al. Development of a chimeric vaccine candidate based on Toxoplasma gondii major surface antigen 1 and apicoplast proteins using comprehensive immunoinformatics approaches. European Journal of Pharmaceutical Sciences. 2021:105837.##6. Robert-Gangneux F, Dardé M-L. Epidemiology of and diagnostic strategies for toxoplasmosis. Clinical microbiology reviews. 2012;25(2):264-96.##7. Dunay IR, Gajurel K, Dhakal R, Liesenfeld O, Montoya JG. Treatment of toxoplasmosis: historical perspective, animal models, and current clinical practice. Clinical microbiology reviews. 2018;31(4).##8. Mévélec M, Lakhrif Z, Dimier-Poisson I. Key Limitations and New Insights Into the Toxoplasma gondii Parasite Stage Switching for Future Vaccine Development in Human, Livestock, and Cats. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2020;10.##9. Sasai M, Yamamoto M. Innate, adaptive, and cell-autonomous immunity against Toxoplasma gondii infection. Experimental & molecular medicine. 2019;51(12):1-10.##10. Wang J-L, Zhang N-Z, Li T-T, He J-J, Elsheikha HM, Zhu X-Q. Advances in the development of anti-Toxoplasma gondii vaccines: challenges, opportunities, and perspectives. Trends in parasitology. 2019;35(3):239-53.##11. Hiszczynska-Sawicka E, Gatkowska JM, Grzybowski MM, DÅUGONSKA H, Hemphill A. Veterinary vaccines against toxoplasmosis. Parasitology. 2014;141(11):1365.##12. Rezaei F, Sarvi S, Sharif M, Hejazi SH, sattar Pagheh A, Aghayan SA, et al. A systematic review of Toxoplasma gondii antigens to find the best vaccine candidates for immunization. Microbial pathogenesis. 2019;126:172-84.##13. Freppel W, Ferguson DJ, Shapiro K, Dubey JP, Puech P-H, Dumètre A. Structure, composition, and roles of the Toxoplasma gondii oocyst and sporocyst walls. The Cell Surface. 2019;5:100016.##14. Dumètre A, Dubey JP, Ferguson DJ, Bongrand P, Azas N, Puech P-H. Mechanics of the Toxoplasma gondii oocyst wall. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2013;110(28):11535-40.##15. Fritz HM, Bowyer PW, Bogyo M, Conrad PA, Boothroyd JC. Proteomic analysis of fractionated Toxoplasma oocysts reveals clues to their environmental resistance. PloS one. 2012;7(1):e29955.##16. Rhee DB, Croken MM, Shieh KR, Sullivan J, Micklem G, Kim K, et al. toxoMine: an integrated omics data warehouse for Toxoplasma gondii systems biology research. Database. 2015;2015.##17. Kardani K, Bolhassani A, Namvar A. An overview of in silico vaccine design against different pathogens and cancer. Expert Review of Vaccines. 2020;19(8):699-726.##18. Foroutan M, Ghaffarifar F, Sharifi Z, Dalimi A, Pirestani M. Bioinformatics analysis of ROP8 protein to improve vaccine design against Toxoplasma gondii. Infection, Genetics and Evolution. 2018;62:193-204.##19. Majidiani H, Soltani S, Ghaffari AD, Sabaghan M, Taghipour A, Foroutan M. In-depth computational analysis of calcium-dependent protein kinase 3 of Toxoplasma gondii provides promising targets for vaccination. Clinical and Experimental Vaccine Research. 2020;9(2):146.##20. Ghaffari AD, Dalimi A, Ghaffarifar F, Pirestani M, Majidiani H. Immunoinformatic analysis of immunogenic B-and T-cell epitopes of MIC4 protein to designing a vaccine candidate against Toxoplasma gondii through a##1. McLeod R, Cohen W, Dovgin S, Finkelstein L, Boyer KM. Human toxoplasma infection. Toxoplasma gondii: Elsevier; 2020. p. 117-227.##2. Khan AH, Noordin R. Serological and molecular rapid diagnostic tests for Toxoplasma infection in humans and animals. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 2020;39(1):19-30.##3. Nayeri T, Sarvi S, Moosazadeh M, Daryani A. Global prevalence of Toxoplasma gondii infection in the aborted fetuses and ruminants that had an abortion: A systematic review and meta-analysis. Veterinary Parasitology. 2021:109370.##4. Hatam-Nahavandi K, Calero-Bernal R, Rahimi MT, Pagheh AS, Zarean M, Dezhkam A, et al. Toxoplasma gondii infection in domestic and wild felids as public health concerns: a systematic review and meta-analysis. Scientific Reports. 2021;11(1):9509.##5. Asghari A, Shamsinia S, Majidiani H, Fatollahzadeh M, Nemati T, Irannejad H, et al. Development of a chimeric vaccine candidate based on Toxoplasma gondii major surface antigen 1 and apicoplast proteins using comprehensive immunoinformatics approaches. European Journal of Pharmaceutical Sciences. 2021:105837.##6. Robert-Gangneux F, Dardé M-L. Epidemiology of and diagnostic strategies for toxoplasmosis. Clinical microbiology reviews. 2012;25(2):264-96.##7. Dunay IR, Gajurel K, Dhakal R, Liesenfeld O, Montoya JG. Treatment of toxoplasmosis: historical perspective, animal models, and current clinical practice. Clinical microbiology reviews. 2018;31(4).##8. Mévélec M, Lakhrif Z, Dimier-Poisson I. Key Limitations and New Insights Into the Toxoplasma gondii Parasite Stage Switching for Future Vaccine Development in Human, Livestock, and Cats. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2020;10.##9. Sasai M, Yamamoto M. Innate, adaptive, and cell-autonomous immunity against Toxoplasma gondii infection. Experimental & molecular medicine. 2019;51(12):1-10.##10. Wang J-L, Zhang N-Z, Li T-T, He J-J, Elsheikha HM, Zhu X-Q. Advances in the development of anti-Toxoplasma gondii vaccines: challenges, opportunities, and perspectives. Trends in parasitology. 2019;35(3):239-53.##11. Hiszczynska-Sawicka E, Gatkowska JM, Grzybowski MM, DÅUGONSKA H, Hemphill A. Veterinary vaccines against toxoplasmosis. Parasitology. 2014;141(11):1365.##12. Rezaei F, Sarvi S, Sharif M, Hejazi SH, sattar Pagheh A, Aghayan SA, et al. A systematic review of Toxoplasma gondii antigens to find the best vaccine candidates for immunization. Microbial pathogenesis. 2019;126:172-84.##13. Freppel W, Ferguson DJ, Shapiro K, Dubey JP, Puech P-H, Dumètre A. Structure, composition, and roles of the Toxoplasma gondii oocyst and sporocyst walls. The Cell Surface. 2019;5:100016.##14. Dumètre A, Dubey JP, Ferguson DJ, Bongrand P, Azas N, Puech P-H. Mechanics of the Toxoplasma gondii oocyst wall. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2013;110(28):11535-40.##15. Fritz HM, Bowyer PW, Bogyo M, Conrad PA, Boothroyd JC. Proteomic analysis of fractionated Toxoplasma oocysts reveals clues to their environmental resistance. PloS one. 2012;7(1):e29955.##16. Rhee DB, Croken MM, Shieh KR, Sullivan J, Micklem G, Kim K, et al. toxoMine: an integrated omics data warehouse for Toxoplasma gondii systems biology research. Database. 2015;2015.##17. Kardani K, Bolhassani A, Namvar A. An overview of in silico vaccine design against different pathogens and cancer. Expert Review of Vaccines. 2020;19(8):699-726.##18. Foroutan M, Ghaffarifar F, Sharifi Z, Dalimi A, Pirestani M. Bioinformatics analysis of ROP8 protein to improve vaccine design against Toxoplasma gondii. Infection, Genetics and Evolution. 2018;62:193-204.##19. Majidiani H, Soltani S, Ghaffari AD, Sabaghan M, Taghipour A, Foroutan M. In-depth computational analysis of calcium-dependent protein kinase 3 of Toxoplasma gondii provides promising targets for vaccination. Clinical and Experimental Vaccine Research. 2020;9(2):146.##20. Ghaffari AD, Dalimi A, Ghaffarifar F, Pirestani M, Majidiani H. Immunoinformatic analysis of immunogenic B-and T-cell epitopes of MIC4 protein to designing a vaccine candidate against Toxoplasma gondii through an in-silico approach. Clinical and Experimental Vaccine Research. 2021;10(1):59. ##

Evaluion of antibody titer of sinipharm and asterazenca vaccines in a cross-sectional study in ilam بررسی تیتر انتی بادی دو واکسن Sinopharm و AsteraZeneca در یک مطالعه مقطعی در شهرایلام 2 1 Coronavirus disease 2019 (COVID-19) ، که سبب ایجاد بیماری جدی تنفسی می شود، نخستین بار در Wuhan، پایتخت Hubei، چین گزارش گردید. Severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) ، یک ویروس پوشش دار، از خانواده ی بتا کرونا ویروس و دارای RNA تک رشته ای است که بعنوان عامل ایجادگر COVID-19 تایید گردیده است. واکسیناسیون موثرترین رویکرد جهت کنترل شیوع سریع این بیماری است. آنتی بادی ها در ایجاد مصونیت ناشی از واکسیناسیون نقش مهمی ایفا می کنند. در مطالعات متعدد ارتباط بین تیتر بالاتر آنتی بادی و ایجاد مصونیت علیه عوامل بیماری زا نشان داده شده است. در این مطالعه، ایمنی زایی و اثر حافظتی دو واکسن Sinopharm و AsteraZeneca با اندازه گیری تیتر IgG سرمی علیه پروتئین spike با استفاده از روش Enzyme-Linked Immunosorbent Assay (Elisa)، 21 روز پس از دوز اول و دوم ارزیابی خواهد گردید. - خلاصه روش اجرای طرح: شرکت کنندگان: 40 فرد سالم شامل 20 فرد دریافت کننده ی واکسن سینوفارم و 20 فرد دریافت کننده ی واکسن آسترازنیکا در این مطالعه شرکت دارند. مصرف کنندگان الکل و مواد مخدر، افراد مبتلا به بیماری های اتوایمیون، بدخیمی ها، مصرف کنندگان داروهای سرکوبگر سیستم ایمنی و مبتلایان به دیگر بیماری های زمینه ای از این مطالعه حذف خواهند شد. پروتکل مطالعه مطابق با اصول اخلاقی پژوهش در دانشگاه علوم پزشکی ایلام انجام خواهد شد. غلظت سرمی IgG علیه SARS-CoV-2 spike protein با استفاده از کیت خریداری شده اندازه گیری خواهد شد. پلیت های میکرو تیتر از جنس پلی استیرن با پروتئین spike پوشانده شده و نمونه های سرمی (1:100 رقیق شده) و کنترل مثبت و منفی به چاهک های پلیت در حجم کلی 100 میکرولیتر اضافه می شوند و پلیت ها در دمای 37°C به مدت 30 دقیقه انکوبه می گردند. پس از پنج مرحله شستشو با بافر شستشو ، 100 میکرولیتر آنتی بادی ضد IgG انسانی متصل به HRP به چاهک ها اضافه شده و نمونه ها در دمای 37°C به مدت 30 دقیقه انکوبه می شوند. پس از پنج مرحله شستشو با بافر شستشو، 50 میکرولیتر محلول سوبسترا TMB و 50 میکرولیتر بافر مربوطه اضافه می گردد و نمونه ها در دمای 37 درجه سانتیگراد به مدت 10 دقیقه انکوبه می شوند. واکنش با افزودن 50 میکرولیتر اسید سولفوریک 2 مولار خاتمه یافت و A450 اندازه گیری خواهد شد. 2 Summary of the necessity of implementing the plan: Coronavirus disease 2019 (COVID-19), which causes serious respiratory illness, was first reported in Wuhan, the capital of Hubei, China. Severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2), a coated virus, belongs to the beta-coronavirus family and contains single-stranded RNA that has been identified as the causative agent of COVID-19. Vaccination is the most effective approach to control the rapid spread of the disease. Antibodies play an important role in creating immunity from vaccination. Numerous studies have shown an association between higher antibody titers and the development of immunity against pathogens. In this study, the immunogenicity and protective effect of Sinopharm and AsteraZeneca vaccines will be evaluated by measuring serum IgG titer against spike protein using Enzyme-Linked Immunosorbent Assay (ELISA), 21 days after the first and second doses. Forty healthy people, including 20 people receiving the Sinofarm vaccine and 20 people receiving the Astraznica vaccine, are taking part in the study. Alcohol and drug users, people with autoimmune diseases, malignancies, users of immunosuppressive drugs, and people with other underlying diseases will be excluded from the study. The study protocol will be conducted in accordance with the ethical principles of research in Ilam University of Medical Sciences. Serum IgG concentration against SARS-CoV-2 spike protein will be measured using the purchased kit. Polystyrene microtiter plates are coated with spike protein and serum samples (diluted 1: 100) and positive and negative controls are added to the plate wells in a total volume of 100 μl and the plates are heated to 37 ° C. They are incubated for 30 minutes. After five washing steps with washing buffer, 50 μl of TMB substrate solution and 50 μl of the corresponding buffer are added and the samples are incubated at 37 ° C for 10 minutes. The reaction was completed by adding 50 μl of 2 M sulfuric acid and the A450 would be measured. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/142017/08/202017/10/72018/12/312019/05/122020/04/42020/10/262020/12/22021/08/22021/06/72021/06/252021/06/92021/09/26 1400/7/4 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/162017/10/242017/10/242019/03/12019/08/272020/06/162021/02/12021/02/142021/08/292021/09/52021/09/152021/11/202021/11/28 1400/9/7 گلاره نجفی gelareh najafi گروه آموزشی فیزیولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران ggggahh18@gmail.com عنایت انوری Enayat Anvari گروه آموزشی فیزیولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران anvari_ph@yahoo.com ایرج احمدی Iraj Ahmadi گروه آموزشی فیزیولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران ahmadiiraj96@gmail.com پرستو شهمیر Parasto Shahmir گروه آموزشی فیزیولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران parastoshahmir@yahoo.com SARS-CoV-2 spike protein Sinopharm AsteraZeneca SARS-CoV-2 spike protein Sinopharm AsteraZeneca 1. Ahn D-G, Shin H-J, Kim M-H, Lee S, Kim H-S, Myoung J, et al. Current status of epidemiology, diagnosis, therapeutics, and vaccines for novel coronavirus disease 2019 (COVID-19). Journal of microbiology and biotechnology. 2020;30(3):313-24.##2. Zhai P, Ding Y, Wu X, Long J, Zhong Y, Li Y. The epidemiology, diagnosis and treatment of COVID-19. International journal of antimicrobial agents. 2020;55(5):105955.##3. Muniyappa R, Gubbi S. COVID-19 pandemic, coronaviruses, and diabetes mellitus. American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. 2020;318(5):E736-E41.##4. Li H, Liu S-M, Yu X-H, Tang S-L, Tang C-K. Coronavirus disease 2019 (COVID-19): current status and future perspectives. International journal of antimicrobial agents. 2020;55(5):105951.##5. Astuti I. Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 (SARS-CoV-2): An overview of viral structure and host response. Diabetes & Metabolic Syndrome: Clinical Research & Reviews. 2020;14(4):407-12.##6. Mohandas S, Yadav PD, Shete-Aich A, Abraham P, Vadrevu KM, Sapkal G, et al. Immunogenicity and protective efficacy of BBV152, whole virion inactivated SARS-CoV-2 vaccine candidates in the Syrian hamster model. IScience. 2021;24(2):102054.##7. Principi N, Esposito S. Why It Is Important to Develop an Effective and Safe Pediatric COVID-19 Vaccine. Vaccines. 2021;9(2):127.##8. Zohar T, Alter G. Dissecting antibody-mediated protection against SARS-CoV-2. Nature Reviews Immunology. 2020;20(7):392-4.##9. Gao T, Hu M, Zhang X, Li H, Zhu L, Liu H, et al. Highly pathogenic coronavirus N protein aggravates lung injury by MASP-2-mediated complement over-activation. MedRxiv. 2020.##10. Wang H, Zhang Y, Huang B, Deng W, Quan Y, Wang W, et al. Development of an inactivated vaccine candidate, BBIBP-CorV, with potent protection against SARS-CoV-2. Cell. 2020;182(3):713-21. e9.##11. Tian J-H, Patel N, Haupt R, Zhou H, Weston S, Hammond H, et al. SARS-CoV-2 spike glycoprotein vaccine candidate NVX-CoV2373 immunogenicity in baboons and protection in mice. Nature communications. 2021;12(1):1-14.##12. Cowling BJ, Lim WW, Perera RA, Fang VJ, Leung GM, Peiris JM, et al. Influenza hemagglutination-inhibition antibody titer as a mediator of vaccine-induced protection for influenza B. Clinical Infectious Diseases. 2019;68(10):1713-7.##13. Goel RR, Apostolidis SA, Painter MM, Mathew D, Pattekar A, Kuthuru O, et al. Distinct antibody and memory B cell responses in SARS-CoV-2 naïve and recovered individuals after mRNA vaccination. Science immunology. 2021;6(58):eabi6950.##14. Lederer K, Castaño D, Atria DG, Oguin III TH, Wang S, Manzoni TB, et al. SARS-CoV-2 mRNA vaccines foster potent antigen-specific germinal center responses associated with neutralizing antibody generation. Immunity. 2020;53(6):1281-95. e5.##15. Laczkó D, Hogan MJ, Toulmin SA, Hicks P, Lederer K, Gaudette BT, et al. A single immunization with nucleoside-modified mRNA vaccines elicits strong cellular and humoral immune responses against SARS-CoV-2 in mice. Immunity. 2020;53(4):724-32. e7.## ##

Effects of diagnostic ultrasound wave on excitability threshold and electroshock induced apoptosis in Rat Hippocampal cells اثرات امواج اولتراسوند برآستانه تحریک پذیری و آپوپتوز سلولی القاشده توسط الکتروشوک درسلول های عصبی ناحیه هیپوکامپ در موش صحرایی نر 2 1 صرع یکی از جدی ترین اختلالات عصبی در دنیااست و فراوانی آن در جمعیت جهان 2 -1 درصد می باشدوکه بیش از 40میلیون نفر در سراسر جهان به آن مبتلا هستند}که امکان شیوع آن در هرسن ،نژادوطبقه اجتماعی متفاوت است. همینطور با توجه به اینکه از بارزترین علائم این بیماری تشنج میباشد و بنا بر مستندات موجود در کشور ما نیز میزان آمار مبتلایان صرع در ایران در حدود 700هزار نفر می باشد(2)، بنابراین به ارتباط بین تشنج و اختلالات مرتبط با آن نیز باید توجه نمود از لحظ آناتومی کابردی بیماری با وجود اختلالات در هیپوکامپ لوب تمپورال و میزان تغییرات فرآیند آپوپتوز در سلولهای هیپوکامپ همراه است.(3) از لحاظ عملکردی به یکی از عوارض تشنج یعنی ، تاثیر بر کانال های یونی در سلولهای مذکور میتوان اشاره کرد و از طرفی باتوجه به استفاده روزافزون از امواج اولتراسوند در سونوگرافی ها و استفاده درمانی از این امواج و وجود گزارشات متعدد مبنی بر اثرات آن بر کانال های یونی وتحریک پذیری سلول ها همچنین اثرات این امواج بر روند آپوپتوز سلول های گوناگون ، احساس نیاز به تحقیق و پژوهش بیشتر در زمینه فوق الذکر کاملا ملموس میباشد. لذا هدف از این مطالعه بررسی اثرات این امواج در بازه تشخیصی MHz5/3با شدت 65mw/cm2 بر آستانه تحریک پذیری سلول های عصبی و همچنین اثر این امواج بر آپوپتوز القا شده توسط الکتروشوک (به عنوان یک عامل تراتوژن اثبات شده در تحقیقهای مداخله ای- کاربردی) در مدل موش رت می باشد. 2 Epilepsy is one of the most serious neurological disorders in the world, and its frequency is 1-2% in the world population, and more than 40 million people worldwide are suffering from it (1), and the possibility of its prevalence is different in every age, race, and social class. Also, taking into account that seizures are one of the most obvious symptoms of this disease, and according to the available documents in our country, the number of people with epilepsy in Iran is around 700,000 (2), so the relationship between seizures and disorders related to It should also be noted that from the anatomical point of view, the disease is associated with disturbances in the temporal lobe of the hippocampus and changes in the apoptosis process in the cells of the hippocampus. (3) From a functional point of view, it is one of the effects of seizures, that is, the effect on the ion channels in the cell. The aforementioned can be mentioned, and on the other hand, due to the increasing use of ultrasound waves in sonography and the therapeutic use of these waves, and the existence of numerous reports about its effects on ion channels and the excitability of cells, as well as the effects of these waves on the process of apoptosis. Various cells, the need for more research in the aforementioned field is quite tangible. Therefore, the purpose of this study is to investigate the effects of these waves in the diagnostic range of 3.5 MHz with an intensity of 65 mw/cm2 on the excitability threshold of nerve cells and also the effect of these waves on apoptosis induced by electroshock (as a proven teratogenic factor in intervention studies) E-applicable) in rat model. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/142017/08/202017/10/72018/12/312019/05/122020/04/42020/10/262020/12/22021/08/22021/06/72021/06/252021/06/92021/09/262021/12/3 1400/9/12 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/162017/10/242017/10/242019/03/12019/08/272020/06/162021/02/12021/02/142021/08/292021/09/52021/09/152021/11/202021/11/282022/02/15 1400/11/26 اردشیر معیری Ardeshir Moayeri گروه آموزشی آناتومی و تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران moayeri46@yahoo.com محمدرضا کفاشیان Mohamadreza Kafashian گروه آموزشی فیزیولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران m_r_kaffashian@yahoo.com ناصر عباسی Naser Abbasi مرکز تحقیقات زیست فناوری و گیاهان دارویی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران ilamfarma@gmail.com Ultrasound waves seizures apoptosis hippocampus pentylenetetrazole امواج اولتراسوند تشنج آپوپتوز هیپوکامپ پنتیلن تترازول 1. Castel-Branco M, Alves G, Figueiredo I, Falcão A, Caramona M. The maximal electroshock seizure (MES) model in the preclinical assessment of potential new antiepileptic drugs. 2009.##2. Gross DW. Diffusion tensor imaging in temporal lobe epilepsy. Epilepsia. 2011;52(s4):32-4.##3. RICHARDSON MP, CHADWICK DW, WEHNER T. Classification of seizures and epilepsies.##4. Löscher W, Schmidt D. Which animal models should be used in the search for new antiepileptic drugs? A proposal based on experimental and clinical considerations. Epilepsy research. 1988;2(3):145-81.##5. Mirhadi K. Effect of Phenylbutazone on Pentylenetetrazole-Induced Seizure in Mice. American Journal of Animal and Veterinary Sciences. 2011;6(4):135-45.##6. Lockshin RA, Williams CM. Programmed cell death—II. Endocrine potentiation of the breakdown of the intersegmental muscles of silkmoths. Journal of Insect Physiology. 1964;10(4):643-9.##7. Gewies A. Introduction to apoptosis. ApoReview. 2003;1.##8. Abramowicz JS, Barnett SB, Duck FA, Edmonds PD, Hynynen KH, Ziskin MC. Fetal thermal effects of diagnostic ultrasound. Journal of Ultrasound in Medicine. 2008;27(4):541-59.##9. Kuldiloke J. Effect of ultrasound, temperature and pressure treatments on enzyme activity and quality indicators of fruit and vegetable juices. PhD TU-Berlin. 2002.##10. Maeda K, Kurjak A. Diagnostic ultrasound safety. J Health Med Informat. 2013;4:139.##1. Castel-Branco M, Alves G, Figueiredo I, Falcão A, Caramona M. The maximal electroshock seizure (MES) model in the preclinical assessment of potential new antiepileptic drugs. 2009.##2. Gross DW. Diffusion tensor imaging in temporal lobe epilepsy. Epilepsia. 2011;52(s4):32-4.##3. RICHARDSON MP, CHADWICK DW, WEHNER T. Classification of seizures and epilepsies.##4. Löscher W, Schmidt D. Which animal models should be used in the search for new antiepileptic drugs? A proposal based on experimental and clinical considerations. Epilepsy research. 1988;2(3):145-81.##5. Mirhadi K. Effect of Phenylbutazone on Pentylenetetrazole-Induced Seizure in Mice. American Journal of Animal and Veterinary Sciences. 2011;6(4):135-45.##6. Lockshin RA, Williams CM. Programmed cell death—II. Endocrine potentiation of the breakdown of the intersegmental muscles of silkmoths. Journal of Insect Physiology. 1964;10(4):643-9.##7. Gewies A. Introduction to apoptosis. ApoReview. 2003;1.##8. Abramowicz JS, Barnett SB, Duck FA, Edmonds PD, Hynynen KH, Ziskin MC. Fetal thermal effects of diagnostic ultrasound. Journal of Ultrasound in Medicine. 2008;27(4):541-59.##9. Kuldiloke J. Effect of ultrasound, temperature and pressure treatments on enzyme activity and quality indicators of fruit and vegetable juices. PhD TU-Berlin. 2002.##10. Maeda K, Kurjak A. Diagnostic ultrasound safety. J Health Med Informat. 2013;4:139. ##

Title: Study of Microbiological and drug resistance pattern of BAL (bronchoalveolar lavage) samples of patients Hospitalized of Imam Khomaini and Shahid Mostafa University Hospitals during one year بررسی الگوی میکروبیولوژی و مقاومت دارویی نمونه های BAL( لاواژ برونکوآلوئولار) گرفته شده از بیماران بستری در بیمارستان های مصطفی خمینی و امام خمینی (ره) شهر ایلام طی دوره ی یک ساله 2 1 زمینه و هدف : بیماری های ریوی یکی از علل شایع مرگ و میر زودرس و ناراحتی های آزاردهنده و جدی در بین مردم می باشد. از آن جایی که میزان بروز پنومونی و عفونت باکتریایی دستگاه تنفس تحتانی می تواند به عنوان معیاری برای ارزیابی چگونگی اقدامات درونی و مداخله ای و هم چنین سیستم کنترل عفونت بیمارستانی باشد، و باتوجه به اینکه مطالعه ای مشابه مطالعه ما در استان ایلام صورت نگرفته ، ضرورت دانستیم مطالعه حاضر را انجام دهیم. موادوروشها : نمونه BAL(برونکوآلوئولار لاواژ) از بیماران با مشکلات تنفسی بستری در بیمارستان به روش برونکوسکوپی گرفته شد. نمونه ها بر روی محیط های کشت روتین باکتریایی کشت داده شد، سپس cfu کلی آنها شمارش و باکتری ها شناسایی گردیدند. و حساسیت آنتی بیوتیکی به روش دیسک دیفیوژن مطابق با پروتکل CLSI انجام گردید . برای تشخیص باکتری های سخت رشد از روش PCR با استفاده از پرایمرهای اختصاصی ژن 16srRNA به ترتیب برای مایکوپلاسما پنومونیه، کلامیدیا پنومونیه و ژن mip برای لژیونلا پنوموفیلا استفاده شد. برای تحلیل داده ها از آزمون chi square و نرم افزار SPSS استفاده شد. در تمام موارد p values < 0.05)) معنی دار در نظر گرفته شد. نتایج: از بین 44 نمونه BAL در بیماران با روش کشت، 100 جدایه تشخیص داده شد که شامل :استافیلوکوکوس اورئوس (24)31.2%، استرپتوکوکوس گروه A (18)23.4%، انتروکوکوس (11)14.3%، آسینتوباکتر بومانی، سودوموناس آئروژینوزا (11)14.3% ، انتروباکتر (10) 13%، میکروکوکوس، استافیلوکوکوس اپیدرمیدیس و کلبسیلا پنومونیه (5) 6.5% بودند. و با روش PCR (4 مورد) 9.1% برای کلامیدیا پنومونیه مثبت گردید و هیچ باندی برای مایکوپلاسما پنومونیه و لژیونلا پنوموفیلا یافت نشد. آسینتوباکترها بیشترین مقاومت 81.8% به آزترونام و سفتازیدیم را نشان دادند. 75% ایزوله های استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به سفوکسیتین (MRSA) و 83.3% دارای ژن mec A بودند و مقاومت به ونکومایسین(VRE) در 27.3% از گونه های انتروکوکوس مشاهده گردید. مقاومت به پیپراسیلین، سفوتاکسیم، سیپروفلوکساسین و ایمیپنم در ایزوله های سودوموناس آئروژینوزا با شیوع 54.5%،45.5%، و 36.4% دیده شد. فراوانی ارگانیسم ها در بخش ICU(46%) بیشتر از سایر بخش ها بود. بحث و نتیجه گیری: وجود MRSA، انتروباکتریاسه های مقاوم به سفالوسپورین های نسل سوم و پسودوموناس و آسینتوباکتر مقاوم به پیپراسیلین،ایمیپنم،سفوتاکسیم،آزترونام و سیپروفلوکساسین در میان بخش های مورد مطالعه و به ویژه بخش ICU از نگرانی های بزرگ هستند. به این علت رعایت اصول کنترل بیماری های عفونی باکتری های مقاوم ضروری می باشد. 2 Background and purpose: Lung diseases are one of the common causes of premature death and annoying and serious ailments among people. Since the incidence rate of pneumonia and bacterial infection of the lower respiratory tract can be used as a criterion for evaluating the internal and interventional measures as well as the hospital infection control system, and considering that a study similar to ours has not been conducted in Ilam province, We found it necessary to conduct the present study. Materials and methods: BAL (bronchoalveolar lavage) samples were taken from hospitalized patients with respiratory problems by bronchoscopy. The samples were cultured on routine bacterial culture media, then their total cfu were counted and bacteria were identified. And antibiotic sensitivity was done by disc diffusion method according to CLSI protocol. PCR method using specific primers of 16srRNA gene for Mycoplasma pneumoniae, Chlamydia pneumoniae and mip gene for Legionella pneumophila was used to detect hard-to-grow bacteria. Chi square test and SPSS software were used for data analysis. In all cases, p values < 0.05) were considered significant. Results: Out of 44 BAL samples in patients by culture method, 100 isolates were detected, including: Staphylococcus aureus (24) 31.2%, Streptococcus group A (18) 23.4%, Enterococcus (11) 14.3%, Acinetobacter baumannii, Pseudomonas aeruginosa (11) 14.3%, Enterobacter (10) 13%, Micrococcus, Staphylococcus epidermidis and Klebsiella pneumoniae (5) 6.5%. And by PCR method (4 cases), 9.1% was positive for Chlamydia pneumoniae and no band was found for Mycoplasma pneumoniae and Legionella pneumophila. Acinetobacter showed the highest resistance of 81.8% to azetronam and ceftazidime. 75% of Staphylococcus aureus isolates resistant to cefoxitin (MRSA) and 83.3% had mec A gene, and resistance to vancomycin (VRE) was observed in 27.3% of enterococcus species. Resistance to piperacillin, cefotaxime, ciprofloxacin, and imipenem was seen in Pseudomonas aeruginosa isolates with a prevalence of 54.5%, 45.5%, and 36.4%. The frequency of organisms in the ICU department (46%) was higher than other departments. Discussion and conclusion: The presence of MRSA, Enterobacteriaceae resistant to third generation cephalosporins and Pseudomonas and Acinetobacter resistant to piperacillin, imipenem, cefotaxime, azetronam and ciprofloxacin among the studied departments and especially the ICU department are major concerns. For this reason, it is necessary to observe the principles of controlling infectious diseases of resistant bacteria. 0 0 2013/04/302013/05/202014/05/142015/05/152015/05/152017/05/142017/08/202017/10/72018/12/312019/05/122020/04/42020/10/262020/12/22021/08/22021/06/72021/06/252021/06/92021/09/262021/12/32023/01/15 1401/10/25 2013/07/102013/07/102014/08/232015/07/112015/09/162017/10/162017/10/242017/10/242019/03/12019/08/272020/06/162021/02/12021/02/142021/08/292021/09/52021/09/152021/11/202021/11/282022/02/152023/01/31 1401/11/11 ایرج پاکزاد Iraj Pakzad مرکز تحقیقات میکروب شناسی بالینی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران pakzad_i2006@yahoo.com زهرا طهماسبی zahra tahmasebi دانشکده پزشکی ایران zahratahmasebi67@gmail.com پریسا اسدللهی parisa asadollahi دانشکده پزشکی ایران asadolahi.p@gmail.com بهروز صادقی کلانی behroz sadeghi kalani دانشکده پزشکی ایران behroz.sadeghi@gmail.com سبحان غفوریان Sobhan Ghafourian مرکز تحقیقات میکروب شناسی بالینی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران sobhan.ghafurian@gmail.com نورخدا صادقی فرد Nourkhoda Sadeghifard مرکز تحقیقات میکروب شناسی بالینی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران ایران sadeghifard@gmail.com اسماعیل قاسمی پاشا کلایی esmail ghasemi pasha kalaei دانشکده پزشکی ایران smaeilghasemi@yahoo.com BAL drug resistance hospitalized patients PCR BAL مقاومت دارویی بیماران بستری PCR 1. Flanders SA, Collard HR, Saint S. Nosocomial pneumonia: state of the science. American journal of infection control. 2006;34(2):84-93.##2. Auerbach PS. Wilderness Medicine: Expert Consult Premium Edition-Enhanced Online Features: Elsevier Health Sciences; 2011.##3. Berenholtz SM, Pronovost PJ, Lipsett PA, Hobson D, Earsing K, Farley JE, et al. Eliminating catheter-related bloodstream infections in the intensive care unit. Critical care medicine. 2004;32(10):2014-20.##4. . Guidelines for the management of adults with hospital-acquired, ventilator-associated, and healthcare-associated pneumonia the official statement of the American Thoracic Society and the Infectious Disease Society of America. 2008;32(10):1444-51.##5. Ibrahim EH, Ward S, Sherman G, Kollef MH. A comparative analysis of patients with early-onset vs late-onset nosocomial pneumonia in the ICU setting. CHEST Journal. 2000;117(5):1434-42.##6. Kucukates E. Antimicrobial resistance among Gram-negative bacteria isolated from intensive care units in a Cardiology Institute in Istanbul, Turkey. Japanese journal of infectious diseases. 2005;58(4):228.##7. Jalalpour S, Kermanshahi RK, Nouhi AS, Esfahani HZ. Surveying the frequency of β-lactamase enzyme and antibiotic sensitivity pattern in isolated pathogen bacteria from low and high hospital contact surfaces. Pejouhandeh. 2010;15(2):Pe77-Pe82, En6.##8. Baldwin D, Wise R, Andrews J, Ashby J, Honeybourne D. Azithromycin concentrations at the sites of pulmonary infection. European Respiratory Journal. 1990;3(8):886-90.##9. Rosenthal VD, Bijie H, Maki DG, Mehta Y, Apisarnthanarak A, Medeiros EA, et al. International Nosocomial Infection Control Consortium (INICC) report, data summary of 36 countries, for 2004-2009. American journal of infection control. 2012;40(5):396-407.##10. Rosenthal VD, Maki DG, Mehta Y, Leblebicioglu H, Memish ZA, Al-Mousa HH, et al. International Nosocomial Infection Control Consortiu (INICC) report, data summary of 43 countries for 2007-2012. Device-associated module. American journal of infection control. 2014;42(9):942-56.##11. Jaggi N, Rodrigues C, Rosenthal VD, Todi SK, Shah S, Saini N, et al. Impact of an international nosocomial infection control consortium multidimensional approach on central line-associated bloodstream infection rates in adult intensive care units in eight cities in India. International Journal of Infectious Diseases. 2013;17(12):e1218-e24.##12. Demirdag YY, Ramadan HH. Direct measurement of upper airway inflammation in children with chronic rhinosinusitis: implications for asthma. Current opinion in allergy and clinical immunology. 2016;16(1):18-23.##13. Brook I. Microbiology of chronic rhinosinusitis. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 2016:1-10.##14. Houben A, Oostdijk E, van der Voort P, Monen J, Bonten M, Van Der Bij A, et al. Selective decontamination of the oropharynx and the digestive tract, and antimicrobial resistance: a 4 year ecological study in 38 intensive care units in the Netherlands. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2014;69(3):797-804.##15. Garg N. Alternative therapies beyond antibiotics: Helicobacter pylori eradication. World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences. 2015;4(9):779-814.##16. Roux D, Pons S, Guillard T, Ricard J-D, Pier GB, Skurnik D. Impact of Drug Resistance on Virulence and Fitness of Bacterial Pathogens. Critical care medicine. 2016;44(1):e50-e1.##17. Dayao DAE, Seddon JM, Gibson JS, Blackall PJ, Turni C. Whole Genome Sequence Analysis of Pig Respiratory Bacterial Pathogens with Elevated Minimum Inhibitory Concentrations for Macrolides. Microbial Drug Resistance. 2016.##18. Johnson LS, MacDougall C, Trivedi KK. The Legislative Momentum of Antimicrobial Stewardship: the US Perspective. Current Treatment Options in Infectious Diseases. 2016;8(2):93-101.##19. Fagon J-Y, Chastre J, Domart Y, Trouillet J-L, Pierre J, Darne C, et al. Nosocomial pneumonia in patients receiving continuous mechanical ventilation: prospective analysis of 52 episodes with use of a protected specimen brush and quantitative culture techniques. American Review of Respiratory Disease. 1989;139(4):877-84.##20. Li X-Z, Mehrotra M. Role of Plasmid-Encoded Drug Efflux Pumps in Antimicrobial Resistance. Efflux-Mediated Antimicrobial Resistance in Bacteria: Springer; 2016. p. 595-623.##21. Blair JM, Webber MA, Baylay AJ, Ogbolu DO, Piddock LJ. Molecular mechanisms of antibiotic resistance. Nature Reviews Microbiology. 2015;13(1):42-51.##22. Trouillet J-L, Chastre J, Vuagnat A, Joly-Guillou M-L, Combaux D, Dombret M-C, et al. Ventilator-associated pneumonia caused by potentially drug-resistant bacteria. American journal of respiratory and critical care medicine. 1998;157(2):531-9.##23. Dagnew M, Yismaw G, Gizachew M, Gadisa A, Abebe T, Tadesse T, et al. Bacterial profile and antimicrobial susceptibility pattern in septicemia suspected patients attending Gondar University Hospital, Northwest Ethiopia. BMC research notes. 2013;6(1):283.##24. Lochan H, Moodley C, Rip D, Bamford C, Hendricks M, Davidson A, et al. Emergence of vancomycin-resistant Enterococcus at a tertiary paediatric hospital in South Africa. South African Medical Journal. 2016;106(6):562-6.##25. Isenman H, Michaels J, Fisher D. Global variances in infection control practices for vancomycin resistant Enterococcus–results of an electronic survey. Antimicrobial Resistance & Infection Control. 2016;5(1):41.##26. Ma XX, Ito T, Tiensasitorn C, Jamklang M, Chongtrakool P, Boyle-Vavra S, et al. Novel type of staphylococcal cassette chromosome mec identified in community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus strains. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2002;46(4):1147-52.##27. Witte W, Strommenger B, Cuny C, Heuck D, Nuebel U. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus containing the Panton-Valentine leucocidin gene in Germany in 2005 and 2006. Journal of antimicrobial chemotherapy. 2007;60(6):1258-63.##28. Oteo J, Baquero F, Vindel A, Campos J, System SmotEARS. Antibiotic resistance in 3113 blood isolates of Staphylococcus aureus in 40 Spanish hospitals participating in the European Antimicrobial Resistance Surveillance System (2000–2002). Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2004;53(6):1033-8.##29. Diekema D, Pfaller M, Schmitz F, Smayevsky J, Bell J, Jones R, et al. Survey of infections due to Staphylococcus species: frequency of occurrence and antimicrobial susceptibility of isolates collected in the United States, Canada, Latin America, Europe, and the Western Pacific region for the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program, 1997–1999. Clinical Infectious Diseases. 2001;32(Supplement 2):S114-S32.##30. Sakoulas G, Gold HS, Venkataraman L, DeGirolami PC, Eliopoulos GM, Qian Q. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus: comparison of susceptibility testing methods and analysis of mecA-positive susceptible strains. Journal of clinical microbiology. 2001;39(11):3946-51.##31. Mirsalehian A, Jebel Ameli F, Kazemi B, Ali-zadeh S. Comparing disc diffusion and PCR in recognizing methicillin resistance in Staphylococcus aureus. Tehran University Medical Journal. 2003;61(6):420-5.##32. Paez A, Skiest D. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus: from the hospital to the community. Current infectious disease reports. 2008;10(1):14-21.##33. Kim HB, Jang H-C, Nam HJ, Lee YS, Kim BS, Park WB, et al. In vitro activities of 28 antimicrobial agents against Staphylococcus aureus isolates from tertiary-care hospitals in Korea: a nationwide survey. Antimicrobial agents and chemotherapy. 2004;48(4):1124-7.##34. Berger-Bächi B, Barberis-Maino L, Strässle A, Kayser FH. FemA, a host-mediated factor essential for methicillin resistance in Staphylococcus aureus: molecular cloning and characterization. Molecular and General Genetics MGG. 1989;219(1-2):263-9.##35. Brown DF, Edwards DI, Hawkey PM, Morrison D, Ridgway GL, Towner KJ, et al. Guidelines for the laboratory diagnosis and susceptibility testing of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA). Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2005;56(6):1000-18.##36. Mäkelä MJ, Puhakka T, Ruuskanen O, Leinonen M, Saikku P, Kimpimäki M, et al. Viruses and bacteria in the etiology of the common cold. Journal of clinical microbiology. 1998;36(2):539-42.##37. Bisno AL, Gerber MA, Gwaltney JM, Kaplan EL, Schwartz RH. Practice guidelines for the diagnosis and management of group A streptococcal pharyngitis. Clinical Infectious Diseases. 2002;35(2):113-25.##38. Tsai J, Shi L, Yu W-L, Hung L-M, Lebrun LA. Physician specialty and the quality of medical care experiences in the context of the Taiwan national health insurance system. The Journal of the American Board of Family Medicine. 2010;23(3):402-12.##39. Tanner K, Fitzsimmons G, Carrol E, Flood T, Clark J. Haemophilus influenza type b epiglottitis as a cause of acute upper airways obstruction in children. British Medical Journal. 2002;325(7372):1099.##40. Shah RK, Roberson DW, Jones DT. Epiglottitis in the Hemophilus influenzae type B vaccine era: changing trends. The Laryngoscope. 2004;114(3):557-60.##41. Karma P, Jokipii L, Sipilä P, Luotonen J, Jokipii AM. Bacteria in chronic maxillary sinusitis. Archives of Otolaryngology. 1979;105(7):386-90.##42. Nord CE. The role of anaerobic bacteria in recurrent episodes of sinusitis and tonsillitis. Clinical infectious diseases. 1995;20(6):1512-24.##43. Erkan M, Aslan T, Özcan M, Koç N. Bacteriology of antrum in adults with chronic maxillary sinusitis. The Laryngoscope. 1994;104(3):321-4.##44. Smith SM, Smucny J, Fahey T. Antibiotics for acute bronchitis. JAMA. 2014;312(24):2678-9.##45. Chodosh S, DeAbate C, Haverstock D, Aneiro L, Church D, Group BS. Short-course moxifloxacin therapy for treatment of acute bacterial exacerbations of chronic bronchitis. Respiratory medicine. 2000;94(1):18-27.##46. Kontoyiannis DP, Lewis RE. Agents of mucormycosis and entomophthoramycosis. Mandell GL, Bennett JE, Dolin R Principles and practice of infectious diseases 7th ed Philadelphia: Churchill livingstone. 2010:3257-69.##47. Lopez AD, Mathers CD, Ezzati M, Jamison DT, Murray CJ. Global and regional burden of disease and risk factors, 2001: systematic analysis of population health data. The Lancet. 2006;367(9524):1747-57.##48. Naderi H, Sheybani F, Sarvghad M, Meshkat Z, Nooghabi MJ. Etiological Diagnosis of Community-Acquired Pneumonia in Adult Patients: A Prospective Hospital-Based Study in Mashhad, Iran. Jundishapur journal of microbiology. 2015;8(8).##49. Williams BG, Gouws E, Boschi-Pinto C, Bryce J, Dye C. Estimates of world-wide distribution of child deaths from acute respiratory infections. The Lancet infectious diseases. 2002;2(1):25-32.##50. Zar HJ. Pneumonia in HIV-infected and HIV-uninfected children in developing countries: epidemiology, clinical features, and management. Current opinion in pulmonary medicine. 2004;10(3):176-82.##51. Burton A, Monasch R, Lautenbach B, Gacic-Dobo M, Neill M, Karimov R, et al. WHO and UNICEF estimates of national infant immunization coverage: methods and processes. Bulletin of the World Health Organization. 2009;87(7):535-41.##52. Karimi A. Active case-finding of communicable diseases in the south of the Islamic Republic of Iran. 2000.##53. Ezzati M, Kammen DM. Indoor air pollution from biomass combustion and acute respiratory infections in Kenya: an exposure-response study. The Lancet. 2001;358(9282):619-24.##54. Tsolia M, Psarras S, Bossios A, Audi H, Paldanius M, Gourgiotis D, et al. Etiology of community-acquired pneumonia in hospitalized school-age children: evidence for high prevalence of viral infections. Clinical infectious diseases. 2004;39(5):681-6.##55. Armin S, Karimi A, Fahimzad A, Fallah F, Shamshiri A. Staphylococcal nasal colonization in Mofid children hospital staff; carrier state and antibiotic susceptibility. Archives of Clinical Infectious Diseases. 2007;2(2).##56. Griffith LE, Gruneir A, Fisher K, Panjwani D, Gandhi S, Sheng L, et al. Patterns of health service use in community living older adults with dementia and comorbid conditions: a population-based retrospective cohort study in Ontario, Canada. BMC geriatrics. 2016;16(1):177.##57. Esperatti EM, Marti AT. Community-Acquired Pneumonia. Respiratory Infections. 2016:95.##58. Muravlyova L, Molotov–Luchankiy V, Bakirova R, Klyuyev D, Demidchik L, Lee V. Characteristic of the Oxidative Stress in Blood of Patients in Dependence of Community-Acquired Pneumonia Severity. Open Access Macedonian Journal of Medical Sciences. 2016;4(1):122.##59. Almirall J, Serra-prat M, Bolibar I. Risk Factors for Community-acquired Pneumonia in Adults. Clinical Pulmonary Medicine. 2016;23(3):99-104.##60. Aliberti S, Tobaldini E, Giuliani F, Nunziata V, Casazza G, Suigo G, et al. Cardiovascular autonomic alterations in hospitalized patients with community-acquired pneumonia. Respiratory Research. 2016;17(1):98.##61. Marrie TJ, Lau CY, Wheeler SL, Wong CJ, Feagan BG. Predictors of symptom resolution in patients with community-acquired pneumonia. Clinical infectious diseases. 2000;31(6):1362-7.##62. Metlay JP, Schulz R, Li Y-H, Singer DE, Marrie TJ, Coley CM, et al. Influence of age on symptoms at presentation in patients with community-acquired pneumonia. Archives of Internal Medicine. 1997;157(13):1453-9.##63. Kaplan V, ANGUS DC, GRIFFIN MF, CLERMONT G, Scott Watson R, LINDE-ZWIRBLE WT. Hospitalized community-acquired pneumonia in the elderly: age-and sex-related patterns of care and outcome in the United States. American journal of respiratory and critical care medicine. 2002;165(6):766-72.##64. Esposito AL. Community-acquired bacteremic pneumococcal pneumonia: effect of age on manifestations and outcome. Archives of internal medicine. 1984;144(5):945-8.##65. Nassaji M, Mosavi S, Ghorbani R. Incidences of nosocomial pneumonia in patients above 15 years in intensive care units of university hospital in Semnan. Koomesh. 2004;5(1):89-94.##66. Trivedi T, Shejale S, Yeolekar M. Nosocomial pneumonia in medical intensive care unit. The Journal of the Association of Physicians of India. 2000;48(11):1070-3.##67. Hoffken G, Niederman MS. Nosocomial pneumonia: the importance of a de-escalating strategy for antibiotic treatment of pneumonia in the ICU. Chest Journal. 2002;122(6):2183-96.##68. Eriksen H, Iversen B, Aavitsland P. Prevalence of nosocomial infections in hospitals in Norway, 2002 and 2003. Journal of Hospital Infection. 2005;60(1):40-5.##69. Elward AM, Warren DK, Fraser VJ. Ventilator-associated pneumonia in pediatric intensive care unit patients: risk factors and outcomes. Pediatrics. 2002;109(5):758-64.##70. Morrow B, Argent A, Jeena PM, Green RJ. Guideline for the diagnosis, prevention and treatment of paediatric ventilator-associated pneumonia. SAMJ: South African Medical Journal. 2009;99(4):255-67.##71. Turk J. Ventilator Associated Pneumonia in Critically Ill Patients: Prevention and Treatment.##72. Principi T, Fraser DD, Morrison GC, Farsi SA, Carrelas JF, Maurice EA, et al. Complications of mechanical ventilation in the pediatric population. Pediatric pulmonology. 2011;46(5):452-7.##73. Michelow IC, Olsen K, Lozano J, Rollins NK, Duffy LB, Ziegler T, et al. Epidemiology and clinical characteristics of community-acquired pneumonia in hospitalized children. Pediatrics. 2004;113(4):701-7.##74. Williams JV, Harris PA, Tollefson SJ, Halburnt-Rush LL, Pingsterhaus JM, Edwards KM, et al. Human metapneumovirus and lower respiratory tract disease in otherwise healthy infants and children. New England Journal of Medicine. 2004;350(5):443-50.##75. Karimi A, Arjomandi A, Alborzi A, Rasouli M, Kadivar M, Obood B, et al. Prevalence of measles antibody in children of different ages in Shiraz, Islamic Republic of Iran. East Mediterr Health J. 2004;10:468-73.##76. Arbique JC, Poyart C, Trieu-Cuot P, Quesne G, Maria da Glória SC, Steigerwalt AG, et al. Accuracy of Phenotypic and Genotypic Testing for Identification of Streptococcus pneumoniae and Description of Streptococcus pseudopneumoniae sp. nov. Journal of clinical microbiology. 2004;42(10):4686-96.##77. OBARO S, Adegbola R. The pneumococcus: carriage, disease and conjugate vaccines. Journal of medical microbiology. 2002;51(2):98-104.##78. SHINEFIELD HR, BLACK S. Efficacy of pneumococcal conjugate vaccines in large scale field trials. The Pediatric infectious disease journal. 2000;19(4):394-7.##79. Ginsburg CM, Howard JB, Nelson JD. Report of 65 cases of Haemophilus influenzae b pneumonia. Pediatrics. 1979;64(3):283-6.##80. Asmar BI, Slovis TL, Reed JO, Dajani AS. Hemophilus influenzae type b pneumonia in 43 children. The Journal of pediatrics. 1978;93(3):389-93.##81. Shann F. Haemophilus influenzae pneumonia: type b or non-type b? The Lancet. 1999;354(9189):1488-90.##82. Martineau F, Picard FJ, Roy PH, Ouellette M, Bergeron MG. Species-specific and ubiquitous-DNA-based assays for rapid identification of Staphylococcus aureus. Journal of Clinical Microbiology. 1998;36(3):618-23.##83. Trujillo M, McCracken Jr GH. Prolonged morbidity in children with group A beta-hemolytic streptococcal pneumonia. The Pediatric infectious disease journal. 1994;13(5):411.##84. Andrews CE, Hopewell P, Burrell RE, Olson NO, Chick EW. An Epidemic of Respiratory Infection Due to Mycoplasma Pneumoniae in a Civilian Population 1, 2. American Review of Respiratory Disease. 1967;95(6):972-9.##85. Waites KB. New concepts of Mycoplasma pneumoniae infections in children. Pediatric pulmonology. 2003;36(4):267-78.##86. Meijer A, Roholl P, Gielis-Proper S, Meulenberg Y, Ossewaarde J. Chlamydia pneumoniae in vitro and in vivo: a critical evaluation of in situ detection methods. Journal of clinical pathology. 2000;53(12):904-10.##87. Blasi F, Damato S, Cosentini R, Tarsia P, Raccanelli R, Centanni S, et al. Chlamydia pneumoniae and chronic bronchitis: association with severity and bacterial clearance following treatment. Thorax. 2002;57(8):672-6.##88. Grayston JT. Background and current knowledge of Chlamydia pneumoniae and atherosclerosis. Journal of Infectious Diseases. 2000;181(Supplement 3):S402-S10.##89. Hogan RJ, Mathews SA, Mukhopadhyay S, Summersgill JT, Timms P. Chlamydial persistence: beyond the biphasic paradigm. Infection and immunity. 2004;72(4):1843-55.##90. Campbell LA, Kuo C-c. Chlamydia pneumoniae—an infectious risk factor for atherosclerosis? Nature Reviews Microbiology. 2004;2(1):23-32.##91. Heiskanen-Kosma T, Korppi M, Laurila A, Jokinen C, Kleemola M, Saikku P. Chlamydia pneumoniae is an important cause of community-acquired pneumonia in school-aged children: serological results of a prospective, population-based study. Scandinavian journal of infectious diseases. 1999;31(3):255-9.##92. ALAVI SM, Moshiri N, MOUSAVIAN SM, YOUSEFI F, ABBASI E. Seroprevalence of Legionella Pneumophila in Patients with Community Acquired Pneumonia. 2010.##93. Fard S, Nomanpour B, Fatolahzadeh B, Mobarez A, Darban-Sarokhalil D, Fooladi A, et al. Hospital acquired pneumonia: comparison of culture and real-time PCR assays for detection of Legionella pneumophila from respiratory specimens at Tehran hospitals. Acta microbiologica et immunologica Hungarica. 2012;59(3):355-65.##94. Pinto KDB, Maggi RRS, Alves JGB. Analysis of social and environmental risk for pleural involvement in severe pneumonia in children younger than 5 years of age. Revista Panamericana de Salud Pública. 2004;15(2):104-9.##95. Chow JS, Chung EM, Colin AA, Cleveland RH, Sawicki GS. Focal lung disease. Imaging in Pediatric Pulmonology: Springer; 2012. p. 193-248.##96. Harris M, Clark J, Coote N, Fletcher P, Harnden A, McKean M, et al. British Thoracic Society Standards of Care Committee. British Thoracic Society guidelines for the management of community acquired pneumonia in children: update 2011. Thorax. 2011;66(suppl 2):ii1-ii23.##97. Committee ACPGS. Guideline for the diagnosis and management of community acquired pneumonia: pediatric. 2002. Accessed online June 1, 2004.##98. Hill PC, Akisanya A, Sankareh K, Cheung YB, Saaka M, Lahai G, et al. Nasopharyngeal carriage of Streptococcus pneumoniae in Gambian villagers. Clinical Infectious Diseases. 2006;43(6):673-9.##99. Lynch T, Platt R, Gouin S, Larson C, Patenaude Y. Can we predict which children with clinically suspected pneumonia will have the presence of focal infiltrates on chest radiographs? Pediatrics. 2004;113(3):e186-e9.##100. Jolis R, Castella J, Puzo C, Coll P, Abeledo C. Diagnostic value of protected BAL in diagnosing pulmonary infections in immunocompromised patients. CHEST Journal. 1996;109(3):601-7.##101. Committee BTSBG. British Thoracic Society guidelines on diagnostic flexible bronchoscopy. Thorax. 2001;56(suppl 1):i1-i21.##102. Toloza E, Cohen L, Garrett J, Moodie C, Greene J. Electromagnetic Navigational Bronchoscopy-Guided Diagnosis of Left Upper Lobe Spiculated Lung Nodule After Prior Right Upper Lobectomy for Non-small Cell Lung Cancer. CHEST Journal. 2016;149(4_S):A423-A.##103. Fernandez L, Sua LF, Velasquez M, Gutiérrez L. P2. 22: Therapeutic Bronchoscopy in Multimodal Therapy for the Management of Central Airway Obstruction in Latin America. Journal of Thoracic Oncology. 2016;11(10):S229-S30.##104. Facciolongo N, Patelli M, Gasparini S, Agli LL, Salio M, Simonassi C, et al. Incidence of complications in bronchoscopy. Multicentre prospective study of 20,986 bronchoscopies. Monaldi Archives for Chest Disease. 2016;71(1).##105. Fernandez L, Sua L, Velasquez M, Gutierrez L. Therapeutic Bronchoscopy in Multimodal Therapy for the Management of Central Airway Obstruction: Experience in Fundación Valle del Lili; a Reference Hospital in Latin America. CHEST Journal. 2016;150(4_S):1010A-A.##106. Grossman LK, Wald ER, Nair P, Papiez J. Roentgenographic follow-up of acute pneumonia in children. Pediatrics. 1979;63(1):30-1.##107. Mahmoud P., SA II, A. B., M. M, Mahmoud M. Antibiotic Resistance gram negative bacteria isolated from respiratory secretions culture Yahyanejad hospital ICU.##108. Family cube, Kachoui * R, Mirnejad R, M n, village Hmm. Nocardiosis factors in bronchial lavage specimens (BAL) Tuberculosis patients referred to Tehran hospitals by PCR. Found. 2016; 16 (4).##109. Naini SE, Naini AE, Shirani K, Mirzadeh F, Bagheri A, Naini other, et al. The severity of pneumonia in patients with acquired pneumonia in adults hospitalized in the Hospital, Al Zahra. Journal of Medical Faculty 0.30 (182).##110. David A., M. of Gez, R. R., Ashraf mem. Lower respiratory tract nosocomial infection with multi-drug resistance in patients hospitalized BAQIYATALLAH (AS) in 1384.##111. Habibiyan, dreams, faith, gleeful. Antibiogram pattern of changes in microorganisms isolated from patients in intensive care units (ICU) Hospital of Ayatollah Kashani in a two year period. University of Medical Sciences. 2012; 14 (1): 77-83.##112. Saber, S, Eastern, Sasan. Bronchoalveolar lavage practical value in detecting pulmonary infections. Faculty of Tehran University of Medical Sciences. 1999; 57 (1): 20-3.##113. Steinhoff D, Lode H, Ruckdeschel G, Heidrich B, Rolfs A, Fehrenbach FJ, et al. Chlamydia pneumoniae as a cause of community-acquired pneumonia in hospitalized patients in Berlin. Clinical infectious diseases. 1996;22(6):958-64.##114. De Schutter I, De Wachter E, Crokaert F, Verhaegen J, Soetens O, Piérard D, et al. Microbiology of bronchoalveolar lavage fluid in children with acute nonresponding or recurrent community-acquired pneumonia: identification of nontypeable Haemophilus influenzae as a major pathogen. Clinical infectious diseases. 2011;52(12):1437-44.##115. Torres A, El-Ebiary M. Bronchoscopic BAL in the diagnosis of ventilator-associated pneumonia. CHEST Journal. 2000;117(4_suppl_2):198S-202S.##116. Gruson D, Hilbert G, Vargas F, VALENTINO R, BEBEAR C, ALLERY A, et al. Rotation and restricted use of antibiotics in a medical intensive care unit: impact on the incidence of ventilator-associated pneumonia caused by antibiotic-resistant gram-negative bacteria. American journal of respiratory and critical care medicine. 2000;162(3):837-43.##117. Shahin J, Bielinski M, Guichon C, Flemming C, Kristof AS. Suspected ventilator-associated respiratory infection in severely ill patients: a prospective observational study. Critical Care. 2013;17(5):1.##118. Dorigo-Zetsma JW, Verkooyen RP, van Helden HP, van der Nat H, van den Bosch JM. Molecular detection of Mycoplasma pneumoniae in adults with community-acquired pneumonia requiring hospitalization. Journal of clinical microbiology. 2001;39(3):1184-6.##119. Daxboeck F, Khanakah G, Bauer C, Stadler M, Hofmann H, Stanek G. Detection of Mycoplasma pneumoniae in serum specimens from patients with mycoplasma pneumonia by PCR. International journal of medical microbiology. 2005;295(4):279-85.##120. Kraft M, Cassell GH, Henson JE, Watson H, Williamson J, Marmion B, et al. Detection of Mycoplasma pneumoniae in the airways of adults with chronic asthma. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 1998;158(3):998-1001.##121. Mika M, Mack I, Korten I, Qi W, Aebi S, Frey U, et al. Dynamics of the nasal microbiota in infancy: A prospective cohort study. Journal of Allergy and Clinical Immunology. 2015;135(4):905-12. e11.##122. Morar P, Singh V, Makura Z, Jones A, Baines P, Selby A, et al. Oropharyngeal carriage and lower airway colonisation/infection in 45 tracheotomised children. Thorax. 2002;57(12):1015-20.##123. Kadayifci EK, Merdan DG, Soysal A, Karaaslan A, Atıcı S, Durmaz R, et al. Prevalence of Neisseria meningitidis carriage: a small-scale survey in Istanbul, Turkey. The Journal of Infection in Developing Countries. 2016;10(04):413-7.##124. Ferraro MJ. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing: NCCLS; 2001.##125. Timenetsky J, Santos L, Buzinhani M, Mettifogo E. Detection of multiple mycoplasma infection in cell cultures by PCR. Brazilian journal of medical and biological research. 2006;39(7):907-14.##126. Krishnan P, Miles K, Shetty N. Detection of methicillin and mupirocin resistance in Staphylococcus aureus isolates using conventional and molecular methods: a descriptive study from a burns unit with high prevalence of MRSA. Journal of clinical pathology. 2002;55(10):745-8.##127. Arvanitidou M, Katikaridou E, Douboyes J, Tsakris A. Prognostic factors for nosocomial bacteraemia out come. J Hosp Infect. 2006;61:219-24.##128. Zolldann D, Haefner H, Poetter C, Buzello S, Sohr D, Luetticken R, et al. Assessment of a selective surveillance method for detecting nosocomial infections in patients in the intensive care department. American journal of infection control. 2003;31(5):261-5.##129. Unal S, Garcia-Rodriguez JA. Activity of meropenem and comparators against Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter spp. isolated in the MYSTIC Program, 2002–2004. Diagnostic Microbiology and infectious disease. 2005;53(4):265-71.##130. Kaoutar B, Joly C, L'Hériteau F, Barbut F, Robert J, Denis M, et al. Nosocomial infections and hospital mortality: a multicentre epidemiological study. Journal of hospital infection. 2004;58(4):268-75.##131. DokuzoĞuz B, Güvener E, Yücesoy M, YuluĞ N, Kocagöz S, Ünal S, et al. Surveillance of antimicrobial resistance among gram-negative isolates from intensive care units in eight hospitals in Turkey. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2000;45(5):695-9.##132. Archer G, Polk R. Treatment and prophylaxis of bacterial infections. HARRISONS PRINCIPLES OF INTERNAL MEDICINE. 2001;1:867-81.##133. Ntagiopoulos PG, Paramythiotou E, Antoniadou A, Giamarellou H, Karabinis A. Impact of an antibiotic restriction policy on the antibiotic resistance patterns of Gram-negative microorganisms in an Intensive Care Unit in Greece. International journal of antimicrobial agents. 2007;30(4):360-5.##134. Laguna TA, Wagner BD, Williams CB, Stevens MJ, Robertson CE, Welchlin CW, et al. Airway Microbiota in Bronchoalveolar Lavage Fluid from Clinically Well Infants with Cystic Fibrosis. PloS one. 2016;11(12):e0167649.##135. Steel A, P, Sultanpur, Ahmad. Prevalence and antimicrobial susceptibility in patients with pneumonia Plybaktryal. Faculty of Tehran University of Medical Sciences. 2015; 73 (9): 632-8.##136. Didgar, Farshid, Sarmadian, or Reddit. Evaluation of the antimicrobial susceptibility of gram-negative bacilli isolated from clinical samples in Vali-asr. Bushehr University of Medical Sciences, Southern Medical. 2014; 17 (5): 938-47.##137. The not-Wes-G, editor prevalence of bacterial causes of respiratory tract infection in hospitalized patients (ICU) and hospital specialty pharmaceutical Sadoghi priorities of the Salhay2009_2010. The First International Congress of Medical Bacteriology; 2011: Tabtiz university of medical sciences.##138. Arad Z, Muzychuk M. Standard integral table algebras generated by a non-real element of small degree: Springer Science & Business Media; 2002.##139. French GL, King SD, St Louis P. Salmonella serotypes, Salmonella typhi phage types, and anti-microbial resistance at the University Hospital of the West Indies, Jamaica. Journal of Hygiene. 1977;79(01):5-16. Rod G., R. A, Zarei, parsley, Palizvan, Jourabchi, et al. The frequency of Moraxella catarrhalis catarrhalis) (Moraxella infection and its risk factors in patients with respiratory infections admitted to hospitals in Tehran and Arak. Results. 2006; 7 (4): 117-22.##141. Singh A, Sen M, Anupurba S, Bhattacharya P. Antibiotic sensitivity pattern of the bacteria isolated from nosocomial infections in ICU. The Journal of communicable diseases. 2002;34(4):257-63.##142. Pitt T, Sparrow M, Warner M, Stefanidou M. Survey of resistance of Pseudomonas aeruginosa from UK patients with cystic fibrosis to six commonly prescribed antimicrobial agents. Thorax. 2003;58(9):794-6.##143. R. H., R. A., A. Kh. Changes in susceptibility of microorganisms isolated from patients in intensive care units (ICU) Hospital of Ayatollah Kashani in a two year period.##144. Shao C, Qu J, He L, Ni C, Hu B. [A control study on bacterial resistance and clinical features of lower respiratory tract infection with Pseudomonas aeruginosa in medical intensive care unit and general ward]. Zhonghua nei ke za zhi. 2002;41(12):813-7.##145. FEYZABADI M, ETEMADI G, SADEGHIAN S, ASADI S, AMIRKHANI A, SHAHRABI FA, et al. DRUG RESISTANCE PATTERNS AND PREVALENCE OF EXTENDED SPECTRUM BETALACTAMASE PRODUCERS AMONG ISOLATES OF KLEBSIELLA PNEUMONIAE CULTURED FROM PATIENTS AT TEHRAN HOSPITALS DURING 2003-2004. 2005.##146. Japoni A, Alborzi A, Rasouli M, Pourabbas B. Modified DNA extraction for rapid PCR detection of methicillin-resistant Staphylococci. Iranian Biomedical Journal. 2004;8(3):161-5.##147. Meng X, Dong M, Wang D, He J, Yang C, Zhu L, et al. Antimicrobial susceptibility patterns of clinical isolates of gram-negative bacteria obtained from intensive care units in a tertiary hospital in Beijing, China. Journal of Chemotherapy. 2011;23(4):207-10.##148. Jean S-S, Teng L-J, Hsueh P-R, Ho S-W, Luh K-T. Antimicrobial susceptibilities among clinical isolates of extended-spectrum cephalosporin-resistant Gram-negative bacteria in a Taiwanese University Hospital. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2002;49(1):69-76.##149. Orrett FA. Resistance patterns among selective Gram-negative bacilli from an intensive care unit in Trinidad, West Indies. Saudi medical journal. 2004;25(4):478-83.##150. Ahmadi K, Dadgari F, Safarinejad MR. Assessing the frequency and antibiotic resistance of nosocomial bacterial infections in the intensive care units and general wards. Journal of infectious diseases and immunity. 2011;3(8):140-8.##151. Sheibani, Shahroudi BC, rare. Prevalence of common etiologic agents of community-acquired pneumonia in Iran reported in the literature review. Medical Journal of Mashhad University of Medical Sciences. 2015; 57 (9): 1002-15.##152. Clyde Jr WA. Clinical overview of typical Mycoplasma pneumoniae infections. Clinical Infectious Diseases. 1993:S32-S6.##153. Ieven M, Ursi D, Van Bever H, Quint W, Niesters H, Goossens H. Detection of Mycoplasma pneumoniae by two polymerase chain reactions and role of M. pneumoniae in acute respiratory tract infections in pediatric patients. Journal of infectious diseases. 1996;173(6):1445-52.##154. Strålin K, Korsgaard J, Olcén P. Evaluation of a multiplex PCR for bacterial pathogens applied to bronchoalveolar lavage. European Respiratory Journal. 2006;28(3):568-75.##155. Mirkalantari S, Mohabati Mobarez A, Hoseini Dost SR, Aslani J. Isolation of Legionella from BAL samples of Legionella pneumonia patients, by PCR and Culture Methods. Modares Journal of Medical Sciences: Pathobiology. 2008;10:75-83.##156. Moosavian S, Pordeli H. Survey of respiratory and urogenital infections due to Mycoplasma in the hospitalized patients in Ahwaz Imam Khomeini Hospital. Journal of Kerman University of Medical Sciences. 2003;10(4). ISSN 1023-9510##1. Flanders SA, Collard HR, Saint S. Nosocomial pneumonia: state of the science. American journal of infection control. 2006;34(2):84-93.##2. Auerbach PS. Wilderness Medicine: Expert Consult Premium Edition-Enhanced Online Features: Elsevier Health Sciences; 2011.##3. Berenholtz SM, Pronovost PJ, Lipsett PA, Hobson D, Earsing K, Farley JE, et al. Eliminating catheter-related bloodstream infections in the intensive care unit. Critical care medicine. 2004;32(10):2014-20.##4. . Guidelines for the management of adults with hospital-acquired, ventilator-associated, and healthcare-associated pneumonia the official statement of the American Thoracic Society and the Infectious Disease Society of America. 2008;32(10):1444-51.##5. Ibrahim EH, Ward S, Sherman G, Kollef MH. A comparative analysis of patients with early-onset vs late-onset nosocomial pneumonia in the ICU setting. CHEST Journal. 2000;117(5):1434-42.##6. Kucukates E. Antimicrobial resistance among Gram-negative bacteria isolated from intensive care units in a Cardiology Institute in Istanbul, Turkey. Japanese journal of infectious diseases. 2005;58(4):228.##7. Jalalpour S, Kermanshahi RK, Nouhi AS, Esfahani HZ. Surveying the frequency of β-lactamase enzyme and antibiotic sensitivity pattern in isolated pathogen bacteria from low and high hospital contact surfaces. Pejouhandeh. 2010;15(2):Pe77-Pe82, En6.##8. Baldwin D, Wise R, Andrews J, Ashby J, Honeybourne D. Azithromycin concentrations at the sites of pulmonary infection. European Respiratory Journal. 1990;3(8):886-90.##9. Rosenthal VD, Bijie H, Maki DG, Mehta Y, Apisarnthanarak A, Medeiros EA, et al. International Nosocomial Infection Control Consortium (INICC) report, data summary of 36 countries, for 2004-2009. American journal of infection control. 2012;40(5):396-407.##10. Rosenthal VD, Maki DG, Mehta Y, Leblebicioglu H, Memish ZA, Al-Mousa HH, et al. International Nosocomial Infection Control Consortiu (INICC) report, data summary of 43 countries for 2007-2012. Device-associated module. American journal of infection control. 2014;42(9):942-56.##11. Jaggi N, Rodrigues C, Rosenthal VD, Todi SK, Shah S, Saini N, et al. Impact of an international nosocomial infection control consortium multidimensional approach on central line-associated bloodstream infection rates in adult intensive care units in eight cities in India. International Journal of Infectious Diseases. 2013;17(12):e1218-e24.##12. Demirdag YY, Ramadan HH. Direct measurement of upper airway inflammation in children with chronic rhinosinusitis: implications for asthma. Current opinion in allergy and clinical immunology. 2016;16(1):18-23.##13. Brook I. Microbiology of chronic rhinosinusitis. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 2016:1-10.##14. Houben A, Oostdijk E, van der Voort P, Monen J, Bonten M, Van Der Bij A, et al. Selective decontamination of the oropharynx and the digestive tract, and antimicrobial resistance: a 4 year ecological study in 38 intensive care units in the Netherlands. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2014;69(3):797-804.##15. Garg N. Alternative therapies beyond antibiotics: Helicobacter pylori eradication. World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences. 2015;4(9):779-814.##16. Roux D, Pons S, Guillard T, Ricard J-D, Pier GB, Skurnik D. Impact of Drug Resistance on Virulence and Fitness of Bacterial Pathogens. Critical care medicine. 2016;44(1):e50-e1.##17. Dayao DAE, Seddon JM, Gibson JS, Blackall PJ, Turni C. Whole Genome Sequence Analysis of Pig Respiratory Bacterial Pathogens with Elevated Minimum Inhibitory Concentrations for Macrolides. Microbial Drug Resistance. 2016.##18. Johnson LS, MacDougall C, Trivedi KK. The Legislative Momentum of Antimicrobial Stewardship: the US Perspective. Current Treatment Options in Infectious Diseases. 2016;8(2):93-101.##19. Fagon J-Y, Chastre J, Domart Y, Trouillet J-L, Pierre J, Darne C, et al. Nosocomial pneumonia in patients receiving continuous mechanical ventilation: prospective analysis of 52 episodes with use of a protected specimen brush and quantitative culture techniques. American Review of Respiratory Disease. 1989;139(4):877-84.##20. Li X-Z, Mehrotra M. Role of Plasmid-Encoded Drug Efflux Pumps in Antimicrobial Resistance. Efflux-Mediated Antimicrobial Resistance in Bacteria: Springer; 2016. p. 595-623.##21. Blair JM, Webber MA, Baylay AJ, Ogbolu DO, Piddock LJ. Molecular mechanisms of antibiotic resistance. Nature Reviews Microbiology. 2015;13(1):42-51.##22. Trouillet J-L, Chastre J, Vuagnat A, Joly-Guillou M-L, Combaux D, Dombret M-C, et al. Ventilator-associated pneumonia caused by potentially drug-resistant bacteria. American journal of respiratory and critical care medicine. 1998;157(2):531-9.##23. Dagnew M, Yismaw G, Gizachew M, Gadisa A, Abebe T, Tadesse T, et al. Bacterial profile and antimicrobial susceptibility pattern in septicemia suspected patients attending Gondar University Hospital, Northwest Ethiopia. BMC research notes. 2013;6(1):283.##24. Lochan H, Moodley C, Rip D, Bamford C, Hendricks M, Davidson A, et al. Emergence of vancomycin-resistant Enterococcus at a tertiary paediatric hospital in South Africa. South African Medical Journal. 2016;106(6):562-6.##25. Isenman H, Michaels J, Fisher D. Global variances in infection control practices for vancomycin resistant Enterococcus–results of an electronic survey. Antimicrobial Resistance & Infection Control. 2016;5(1):41.##26. Ma XX, Ito T, Tiensasitorn C, Jamklang M, Chongtrakool P, Boyle-Vavra S, et al. Novel type of staphylococcal cassette chromosome mec identified in community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus strains. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2002;46(4):1147-52.##27. Witte W, Strommenger B, Cuny C, Heuck D, Nuebel U. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus containing the Panton-Valentine leucocidin gene in Germany in 2005 and 2006. Journal of antimicrobial chemotherapy. 2007;60(6):1258-63.##28. Oteo J, Baquero F, Vindel A, Campos J, System SmotEARS. Antibiotic resistance in 3113 blood isolates of Staphylococcus aureus in 40 Spanish hospitals participating in the European Antimicrobial Resistance Surveillance System (2000–2002). Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2004;53(6):1033-8.##29. Diekema D, Pfaller M, Schmitz F, Smayevsky J, Bell J, Jones R, et al. Survey of infections due to Staphylococcus species: frequency of occurrence and antimicrobial susceptibility of isolates collected in the United States, Canada, Latin America, Europe, and the Western Pacific region for the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program, 1997–1999. Clinical Infectious Diseases. 2001;32(Supplement 2):S114-S32.##30. Sakoulas G, Gold HS, Venkataraman L, DeGirolami PC, Eliopoulos GM, Qian Q. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus: comparison of susceptibility testing methods and analysis of mecA-positive susceptible strains. Journal of clinical microbiology. 2001;39(11):3946-51.##31. Mirsalehian A, Jebel Ameli F, Kazemi B, Ali-zadeh S. Comparing disc diffusion and PCR in recognizing methicillin resistance in Staphylococcus aureus. Tehran University Medical Journal. 2003;61(6):420-5.##32. Paez A, Skiest D. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus: from the hospital to the community. Current infectious disease reports. 2008;10(1):14-21.##33. Kim HB, Jang H-C, Nam HJ, Lee YS, Kim BS, Park WB, et al. In vitro activities of 28 antimicrobial agents against Staphylococcus aureus isolates from tertiary-care hospitals in Korea: a nationwide survey. Antimicrobial agents and chemotherapy. 2004;48(4):1124-7.##34. Berger-Bächi B, Barberis-Maino L, Strässle A, Kayser FH. FemA, a host-mediated factor essential for methicillin resistance in Staphylococcus aureus: molecular cloning and characterization. Molecular and General Genetics MGG. 1989;219(1-2):263-9.##35. Brown DF, Edwards DI, Hawkey PM, Morrison D, Ridgway GL, Towner KJ, et al. Guidelines for the laboratory diagnosis and susceptibility testing of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA). Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2005;56(6):1000-18.##36. Mäkelä MJ, Puhakka T, Ruuskanen O, Leinonen M, Saikku P, Kimpimäki M, et al. Viruses and bacteria in the etiology of the common cold. Journal of clinical microbiology. 1998;36(2):539-42.##37. Bisno AL, Gerber MA, Gwaltney JM, Kaplan EL, Schwartz RH. Practice guidelines for the diagnosis and management of group A streptococcal pharyngitis. Clinical Infectious Diseases. 2002;35(2):113-25.##38. Tsai J, Shi L, Yu W-L, Hung L-M, Lebrun LA. Physician specialty and the quality of medical care experiences in the context of the Taiwan national health insurance system. The Journal of the American Board of Family Medicine. 2010;23(3):402-12.##39. Tanner K, Fitzsimmons G, Carrol E, Flood T, Clark J. Haemophilus influenza type b epiglottitis as a cause of acute upper airways obstruction in children. British Medical Journal. 2002;325(7372):1099.##40. Shah RK, Roberson DW, Jones DT. Epiglottitis in the Hemophilus influenzae type B vaccine era: changing trends. The Laryngoscope. 2004;114(3):557-60.##41. Karma P, Jokipii L, Sipilä P, Luotonen J, Jokipii AM. Bacteria in chronic maxillary sinusitis. Archives of Otolaryngology. 1979;105(7):386-90.##42. Nord CE. The role of anaerobic bacteria in recurrent episodes of sinusitis and tonsillitis. Clinical infectious diseases. 1995;20(6):1512-24.##43. Erkan M, Aslan T, Özcan M, Koç N. Bacteriology of antrum in adults with chronic maxillary sinusitis. The Laryngoscope. 1994;104(3):321-4.##44. Smith SM, Smucny J, Fahey T. Antibiotics for acute bronchitis. JAMA. 2014;312(24):2678-9.##45. Chodosh S, DeAbate C, Haverstock D, Aneiro L, Church D, Group BS. Short-course moxifloxacin therapy for treatment of acute bacterial exacerbations of chronic bronchitis. Respiratory medicine. 2000;94(1):18-27.##46. Kontoyiannis DP, Lewis RE. Agents of mucormycosis and entomophthoramycosis. Mandell GL, Bennett JE, Dolin R Principles and practice of infectious diseases 7th ed Philadelphia: Churchill livingstone. 2010:3257-69.##47. Lopez AD, Mathers CD, Ezzati M, Jamison DT, Murray CJ. Global and regional burden of disease and risk factors, 2001: systematic analysis of population health data. The Lancet. 2006;367(9524):1747-57.##48. Naderi H, Sheybani F, Sarvghad M, Meshkat Z, Nooghabi MJ. Etiological Diagnosis of Community-Acquired Pneumonia in Adult Patients: A Prospective Hospital-Based Study in Mashhad, Iran. Jundishapur journal of microbiology. 2015;8(8).##49. Williams BG, Gouws E, Boschi-Pinto C, Bryce J, Dye C. Estimates of world-wide distribution of child deaths from acute respiratory infections. The Lancet infectious diseases. 2002;2(1):25-32.##50. Zar HJ. Pneumonia in HIV-infected and HIV-uninfected children in developing countries: epidemiology, clinical features, and management. Current opinion in pulmonary medicine. 2004;10(3):176-82.##51. Burton A, Monasch R, Lautenbach B, Gacic-Dobo M, Neill M, Karimov R, et al. WHO and UNICEF estimates of national infant immunization coverage: methods and processes. Bulletin of the World Health Organization. 2009;87(7):535-41.##52. Karimi A. Active case-finding of communicable diseases in the south of the Islamic Republic of Iran. 2000.##53. Ezzati M, Kammen DM. Indoor air pollution from biomass combustion and acute respiratory infections in Kenya: an exposure-response study. The Lancet. 2001;358(9282):619-24.##54. Tsolia M, Psarras S, Bossios A, Audi H, Paldanius M, Gourgiotis D, et al. Etiology of community-acquired pneumonia in hospitalized school-age children: evidence for high prevalence of viral infections. Clinical infectious diseases. 2004;39(5):681-6.##55. Armin S, Karimi A, Fahimzad A, Fallah F, Shamshiri A. Staphylococcal nasal colonization in Mofid children hospital staff; carrier state and antibiotic susceptibility. Archives of Clinical Infectious Diseases. 2007;2(2).##56. Griffith LE, Gruneir A, Fisher K, Panjwani D, Gandhi S, Sheng L, et al. Patterns of health service use in community living older adults with dementia and comorbid conditions: a population-based retrospective cohort study in Ontario, Canada. BMC geriatrics. 2016;16(1):177.##57. Esperatti EM, Marti AT. Community-Acquired Pneumonia. Respiratory Infections. 2016:95.##58. Muravlyova L, Molotov–Luchankiy V, Bakirova R, Klyuyev D, Demidchik L, Lee V. Characteristic of the Oxidative Stress in Blood of Patients in Dependence of Community-Acquired Pneumonia Severity. Open Access Macedonian Journal of Medical Sciences. 2016;4(1):122.##59. Almirall J, Serra-prat M, Bolibar I. Risk Factors for Community-acquired Pneumonia in Adults. Clinical Pulmonary Medicine. 2016;23(3):99-104.##60. Aliberti S, Tobaldini E, Giuliani F, Nunziata V, Casazza G, Suigo G, et al. Cardiovascular autonomic alterations in hospitalized patients with community-acquired pneumonia. Respiratory Research. 2016;17(1):98.##61. Marrie TJ, Lau CY, Wheeler SL, Wong CJ, Feagan BG. Predictors of symptom resolution in patients with community-acquired pneumonia. Clinical infectious diseases. 2000;31(6):1362-7.##62. Metlay JP, Schulz R, Li Y-H, Singer DE, Marrie TJ, Coley CM, et al. Influence of age on symptoms at presentation in patients with community-acquired pneumonia. Archives of Internal Medicine. 1997;157(13):1453-9.##63. Kaplan V, ANGUS DC, GRIFFIN MF, CLERMONT G, Scott Watson R, LINDE-ZWIRBLE WT. Hospitalized community-acquired pneumonia in the elderly: age-and sex-related patterns of care and outcome in the United States. American journal of respiratory and critical care medicine. 2002;165(6):766-72.##64. Esposito AL. Community-acquired bacteremic pneumococcal pneumonia: effect of age on manifestations and outcome. Archives of internal medicine. 1984;144(5):945-8.##65. Nassaji M, Mosavi S, Ghorbani R. Incidences of nosocomial pneumonia in patients above 15 years in intensive care units of university hospital in Semnan. Koomesh. 2004;5(1):89-94.##66. Trivedi T, Shejale S, Yeolekar M. Nosocomial pneumonia in medical intensive care unit. The Journal of the Association of Physicians of India. 2000;48(11):1070-3.##67. Hoffken G, Niederman MS. Nosocomial pneumonia: the importance of a de-escalating strategy for antibiotic treatment of pneumonia in the ICU. Chest Journal. 2002;122(6):2183-96.##68. Eriksen H, Iversen B, Aavitsland P. Prevalence of nosocomial infections in hospitals in Norway, 2002 and 2003. Journal of Hospital Infection. 2005;60(1):40-5.##69. Elward AM, Warren DK, Fraser VJ. Ventilator-associated pneumonia in pediatric intensive care unit patients: risk factors and outcomes. Pediatrics. 2002;109(5):758-64.##70. Morrow B, Argent A, Jeena PM, Green RJ. Guideline for the diagnosis, prevention and treatment of paediatric ventilator-associated pneumonia. SAMJ: South African Medical Journal. 2009;99(4):255-67.##71. Turk J. Ventilator Associated Pneumonia in Critically Ill Patients: Prevention and Treatment.##72. Principi T, Fraser DD, Morrison GC, Farsi SA, Carrelas JF, Maurice EA, et al. Complications of mechanical ventilation in the pediatric population. Pediatric pulmonology. 2011;46(5):452-7.##73. Michelow IC, Olsen K, Lozano J, Rollins NK, Duffy LB, Ziegler T, et al. Epidemiology and clinical characteristics of community-acquired pneumonia in hospitalized children. Pediatrics. 2004;113(4):701-7.##74. Williams JV, Harris PA, Tollefson SJ, Halburnt-Rush LL, Pingsterhaus JM, Edwards KM, et al. Human metapneumovirus and lower respiratory tract disease in otherwise healthy infants and children. New England Journal of Medicine. 2004;350(5):443-50.##75. Karimi A, Arjomandi A, Alborzi A, Rasouli M, Kadivar M, Obood B, et al. Prevalence of measles antibody in children of different ages in Shiraz, Islamic Republic of Iran. East Mediterr Health J. 2004;10:468-73.##76. Arbique JC, Poyart C, Trieu-Cuot P, Quesne G, Maria da Glória SC, Steigerwalt AG, et al. Accuracy of Phenotypic and Genotypic Testing for Identification of Streptococcus pneumoniae and Description of Streptococcus pseudopneumoniae sp. nov. Journal of clinical microbiology. 2004;42(10):4686-96.##77. OBARO S, Adegbola R. The pneumococcus: carriage, disease and conjugate vaccines. Journal of medical microbiology. 2002;51(2):98-104.##78. SHINEFIELD HR, BLACK S. Efficacy of pneumococcal conjugate vaccines in large scale field trials. The Pediatric infectious disease journal. 2000;19(4):394-7.##79. Ginsburg CM, Howard JB, Nelson JD. Report of 65 cases of Haemophilus influenzae b pneumonia. Pediatrics. 1979;64(3):283-6.##80. Asmar BI, Slovis TL, Reed JO, Dajani AS. Hemophilus influenzae type b pneumonia in 43 children. The Journal of pediatrics. 1978;93(3):389-93.##81. Shann F. Haemophilus influenzae pneumonia: type b or non-type b? The Lancet. 1999;354(9189):1488-90.##82. Martineau F, Picard FJ, Roy PH, Ouellette M, Bergeron MG. Species-specific and ubiquitous-DNA-based assays for rapid identification of Staphylococcus aureus. Journal of Clinical Microbiology. 1998;36(3):618-23.##83. Trujillo M, McCracken Jr GH. Prolonged morbidity in children with group A beta-hemolytic streptococcal pneumonia. The Pediatric infectious disease journal. 1994;13(5):411.##84. Andrews CE, Hopewell P, Burrell RE, Olson NO, Chick EW. An Epidemic of Respiratory Infection Due to Mycoplasma Pneumoniae in a Civilian Population 1, 2. American Review of Respiratory Disease. 1967;95(6):972-9.##85. Waites KB. New concepts of Mycoplasma pneumoniae infections in children. Pediatric pulmonology. 2003;36(4):267-78.##86. Meijer A, Roholl P, Gielis-Proper S, Meulenberg Y, Ossewaarde J. Chlamydia pneumoniae in vitro and in vivo: a critical evaluation of in situ detection methods. Journal of clinical pathology. 2000;53(12):904-10.##87. Blasi F, Damato S, Cosentini R, Tarsia P, Raccanelli R, Centanni S, et al. Chlamydia pneumoniae and chronic bronchitis: association with severity and bacterial clearance following treatment. Thorax. 2002;57(8):672-6.##88. Grayston JT. Background and current knowledge of Chlamydia pneumoniae and atherosclerosis. Journal of Infectious Diseases. 2000;181(Supplement 3):S402-S10.##89. Hogan RJ, Mathews SA, Mukhopadhyay S, Summersgill JT, Timms P. Chlamydial persistence: beyond the biphasic paradigm. Infection and immunity. 2004;72(4):1843-55.##90. Campbell LA, Kuo C-c. Chlamydia pneumoniae—an infectious risk factor for atherosclerosis? Nature Reviews Microbiology. 2004;2(1):23-32.##91. Heiskanen-Kosma T, Korppi M, Laurila A, Jokinen C, Kleemola M, Saikku P. Chlamydia pneumoniae is an important cause of community-acquired pneumonia in school-aged children: serological results of a prospective, population-based study. Scandinavian journal of infectious diseases. 1999;31(3):255-9.##92. ALAVI SM, Moshiri N, MOUSAVIAN SM, YOUSEFI F, ABBASI E. Seroprevalence of Legionella Pneumophila in Patients with Community Acquired Pneumonia. 2010.##93. Fard S, Nomanpour B, Fatolahzadeh B, Mobarez A, Darban-Sarokhalil D, Fooladi A, et al. Hospital acquired pneumonia: comparison of culture and real-time PCR assays for detection of Legionella pneumophila from respiratory specimens at Tehran hospitals. Acta microbiologica et immunologica Hungarica. 2012;59(3):355-65.##94. Pinto KDB, Maggi RRS, Alves JGB. Analysis of social and environmental risk for pleural involvement in severe pneumonia in children younger than 5 years of age. Revista Panamericana de Salud Pública. 2004;15(2):104-9.##95. Chow JS, Chung EM, Colin AA, Cleveland RH, Sawicki GS. Focal lung disease. Imaging in Pediatric Pulmonology: Springer; 2012. p. 193-248.##96. Harris M, Clark J, Coote N, Fletcher P, Harnden A, McKean M, et al. British Thoracic Society Standards of Care Committee. British Thoracic Society guidelines for the management of community acquired pneumonia in children: update 2011. Thorax. 2011;66(suppl 2):ii1-ii23.##97. Committee ACPGS. Guideline for the diagnosis and management of community acquired pneumonia: pediatric. 2002. Accessed online June 1, 2004.##98. Hill PC, Akisanya A, Sankareh K, Cheung YB, Saaka M, Lahai G, et al. Nasopharyngeal carriage of Streptococcus pneumoniae in Gambian villagers. Clinical Infectious Diseases. 2006;43(6):673-9.##99. Lynch T, Platt R, Gouin S, Larson C, Patenaude Y. Can we predict which children with clinically suspected pneumonia will have the presence of focal infiltrates on chest radiographs? Pediatrics. 2004;113(3):e186-e9.##100. Jolis R, Castella J, Puzo C, Coll P, Abeledo C. Diagnostic value of protected BAL in diagnosing pulmonary infections in immunocompromised patients. CHEST Journal. 1996;109(3):601-7.##101. Committee BTSBG. British Thoracic Society guidelines on diagnostic flexible bronchoscopy. Thorax. 2001;56(suppl 1):i1-i21.##102. Toloza E, Cohen L, Garrett J, Moodie C, Greene J. Electromagnetic Navigational Bronchoscopy-Guided Diagnosis of Left Upper Lobe Spiculated Lung Nodule After Prior Right Upper Lobectomy for Non-small Cell Lung Cancer. CHEST Journal. 2016;149(4_S):A423-A.##103. Fernandez L, Sua LF, Velasquez M, Gutiérrez L. P2. 22: Therapeutic Bronchoscopy in Multimodal Therapy for the Management of Central Airway Obstruction in Latin America. Journal of Thoracic Oncology. 2016;11(10):S229-S30.##104. Facciolongo N, Patelli M, Gasparini S, Agli LL, Salio M, Simonassi C, et al. Incidence of complications in bronchoscopy. Multicentre prospective study of 20,986 bronchoscopies. Monaldi Archives for Chest Disease. 2016;71(1).##105. Fernandez L, Sua L, Velasquez M, Gutierrez L. Therapeutic Bronchoscopy in Multimodal Therapy for the Management of Central Airway Obstruction: Experience in Fundación Valle del Lili; a Reference Hospital in Latin America. CHEST Journal. 2016;150(4_S):1010A-A.##106. Grossman LK, Wald ER, Nair P, Papiez J. Roentgenographic follow-up of acute pneumonia in children. Pediatrics. 1979;63(1):30-1.##107. Mahmoud P., SA II, A. B., M. M, Mahmoud M. Antibiotic Resistance gram negative bacteria isolated from respiratory secretions culture Yahyanejad hospital ICU.##108. Family cube, Kachoui * R, Mirnejad R, M n, village Hmm. Nocardiosis factors in bronchial lavage specimens (BAL) Tuberculosis patients referred to Tehran hospitals by PCR. Found. 2016; 16 (4).##109. Naini SE, Naini AE, Shirani K, Mirzadeh F, Bagheri A, Naini other, et al. The severity of pneumonia in patients with acquired pneumonia in adults hospitalized in the Hospital, Al Zahra. Journal of Medical Faculty 0.30 (182).##110. David A., M. of Gez, R. R., Ashraf mem. Lower respiratory tract nosocomial infection with multi-drug resistance in patients hospitalized BAQIYATALLAH (AS) in 1384.##111. Habibiyan, dreams, faith, gleeful. Antibiogram pattern of changes in microorganisms isolated from patients in intensive care units (ICU) Hospital of Ayatollah Kashani in a two year period. University of Medical Sciences. 2012; 14 (1): 77-83.##112. Saber, S, Eastern, Sasan. Bronchoalveolar lavage practical value in detecting pulmonary infections. Faculty of Tehran University of Medical Sciences. 1999; 57 (1): 20-3.##113. Steinhoff D, Lode H, Ruckdeschel G, Heidrich B, Rolfs A, Fehrenbach FJ, et al. Chlamydia pneumoniae as a cause of community-acquired pneumonia in hospitalized patients in Berlin. Clinical infectious diseases. 1996;22(6):958-64.##114. De Schutter I, De Wachter E, Crokaert F, Verhaegen J, Soetens O, Piérard D, et al. Microbiology of bronchoalveolar lavage fluid in children with acute nonresponding or recurrent community-acquired pneumonia: identification of nontypeable Haemophilus influenzae as a major pathogen. Clinical infectious diseases. 2011;52(12):1437-44.##115. Torres A, El-Ebiary M. Bronchoscopic BAL in the diagnosis of ventilator-associated pneumonia. CHEST Journal. 2000;117(4_suppl_2):198S-202S.##116. Gruson D, Hilbert G, Vargas F, VALENTINO R, BEBEAR C, ALLERY A, et al. Rotation and restricted use of antibiotics in a medical intensive care unit: impact on the incidence of ventilator-associated pneumonia caused by antibiotic-resistant gram-negative bacteria. American journal of respiratory and critical care medicine. 2000;162(3):837-43.##117. Shahin J, Bielinski M, Guichon C, Flemming C, Kristof AS. Suspected ventilator-associated respiratory infection in severely ill patients: a prospective observational study. Critical Care. 2013;17(5):1.##118. Dorigo-Zetsma JW, Verkooyen RP, van Helden HP, van der Nat H, van den Bosch JM. Molecular detection of Mycoplasma pneumoniae in adults with community-acquired pneumonia requiring hospitalization. Journal of clinical microbiology. 2001;39(3):1184-6.##119. Daxboeck F, Khanakah G, Bauer C, Stadler M, Hofmann H, Stanek G. Detection of Mycoplasma pneumoniae in serum specimens from patients with mycoplasma pneumonia by PCR. International journal of medical microbiology. 2005;295(4):279-85.##120. Kraft M, Cassell GH, Henson JE, Watson H, Williamson J, Marmion B, et al. Detection of Mycoplasma pneumoniae in the airways of adults with chronic asthma. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 1998;158(3):998-1001.##121. Mika M, Mack I, Korten I, Qi W, Aebi S, Frey U, et al. Dynamics of the nasal microbiota in infancy: A prospective cohort study. Journal of Allergy and Clinical Immunology. 2015;135(4):905-12. e11.##122. Morar P, Singh V, Makura Z, Jones A, Baines P, Selby A, et al. Oropharyngeal carriage and lower airway colonisation/infection in 45 tracheotomised children. Thorax. 2002;57(12):1015-20.##123. Kadayifci EK, Merdan DG, Soysal A, Karaaslan A, Atıcı S, Durmaz R, et al. Prevalence of Neisseria meningitidis carriage: a small-scale survey in Istanbul, Turkey. The Journal of Infection in Developing Countries. 2016;10(04):413-7.##124. Ferraro MJ. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing: NCCLS; 2001.##125. Timenetsky J, Santos L, Buzinhani M, Mettifogo E. Detection of multiple mycoplasma infection in cell cultures by PCR. Brazilian journal of medical and biological research. 2006;39(7):907-14.##126. Krishnan P, Miles K, Shetty N. Detection of methicillin and mupirocin resistance in Staphylococcus aureus isolates using conventional and molecular methods: a descriptive study from a burns unit with high prevalence of MRSA. Journal of clinical pathology. 2002;55(10):745-8.##127. Arvanitidou M, Katikaridou E, Douboyes J, Tsakris A. Prognostic factors for nosocomial bacteraemia out come. J Hosp Infect. 2006;61:219-24.##128. Zolldann D, Haefner H, Poetter C, Buzello S, Sohr D, Luetticken R, et al. Assessment of a selective surveillance method for detecting nosocomial infections in patients in the intensive care department. American journal of infection control. 2003;31(5):261-5.##129. Unal S, Garcia-Rodriguez JA. Activity of meropenem and comparators against Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter spp. isolated in the MYSTIC Program, 2002–2004. Diagnostic Microbiology and infectious disease. 2005;53(4):265-71.##130. Kaoutar B, Joly C, L'Hériteau F, Barbut F, Robert J, Denis M, et al. Nosocomial infections and hospital mortality: a multicentre epidemiological study. Journal of hospital infection. 2004;58(4):268-75.##131. DokuzoĞuz B, Güvener E, Yücesoy M, YuluĞ N, Kocagöz S, Ünal S, et al. Surveillance of antimicrobial resistance among gram-negative isolates from intensive care units in eight hospitals in Turkey. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2000;45(5):695-9.##132. Archer G, Polk R. Treatment and prophylaxis of bacterial infections. HARRISONS PRINCIPLES OF INTERNAL MEDICINE. 2001;1:867-81.##133. Ntagiopoulos PG, Paramythiotou E, Antoniadou A, Giamarellou H, Karabinis A. Impact of an antibiotic restriction policy on the antibiotic resistance patterns of Gram-negative microorganisms in an Intensive Care Unit in Greece. International journal of antimicrobial agents. 2007;30(4):360-5.##134. Laguna TA, Wagner BD, Williams CB, Stevens MJ, Robertson CE, Welchlin CW, et al. Airway Microbiota in Bronchoalveolar Lavage Fluid from Clinically Well Infants with Cystic Fibrosis. PloS one. 2016;11(12):e0167649.##135. Steel A, P, Sultanpur, Ahmad. Prevalence and antimicrobial susceptibility in patients with pneumonia Plybaktryal. Faculty of Tehran University of Medical Sciences. 2015; 73 (9): 632-8.##136. Didgar, Farshid, Sarmadian, or Reddit. Evaluation of the antimicrobial susceptibility of gram-negative bacilli isolated from clinical samples in Vali-asr. Bushehr University of Medical Sciences, Southern Medical. 2014; 17 (5): 938-47.##137. The not-Wes-G, editor prevalence of bacterial causes of respiratory tract infection in hospitalized patients (ICU) and hospital specialty pharmaceutical Sadoghi priorities of the Salhay2009_2010. The First International Congress of Medical Bacteriology; 2011: Tabtiz university of medical sciences.##138. Arad Z, Muzychuk M. Standard integral table algebras generated by a non-real element of small degree: Springer Science & Business Media; 2002.##139. French GL, King SD, St Louis P. Salmonella serotypes, Salmonella typhi phage types, and anti-microbial resistance at the University Hospital of the West Indies, Jamaica. Journal of Hygiene. 1977;79(01):5-16. Rod G., R. A, Zarei, parsley, Palizvan, Jourabchi, et al. The frequency of Moraxella catarrhalis catarrhalis) (Moraxella infection and its risk factors in patients with respiratory infections admitted to hospitals in Tehran and Arak. Results. 2006; 7 (4): 117-22.##141. Singh A, Sen M, Anupurba S, Bhattacharya P. Antibiotic sensitivity pattern of the bacteria isolated from nosocomial infections in ICU. The Journal of communicable diseases. 2002;34(4):257-63.##142. Pitt T, Sparrow M, Warner M, Stefanidou M. Survey of resistance of Pseudomonas aeruginosa from UK patients with cystic fibrosis to six commonly prescribed antimicrobial agents. Thorax. 2003;58(9):794-6.##143. R. H., R. A., A. Kh. Changes in susceptibility of microorganisms isolated from patients in intensive care units (ICU) Hospital of Ayatollah Kashani in a two year period.##144. Shao C, Qu J, He L, Ni C, Hu B. [A control study on bacterial resistance and clinical features of lower respiratory tract infection with Pseudomonas aeruginosa in medical intensive care unit and general ward]. Zhonghua nei ke za zhi. 2002;41(12):813-7.##145. FEYZABADI M, ETEMADI G, SADEGHIAN S, ASADI S, AMIRKHANI A, SHAHRABI FA, et al. DRUG RESISTANCE PATTERNS AND PREVALENCE OF EXTENDED SPECTRUM BETALACTAMASE PRODUCERS AMONG ISOLATES OF KLEBSIELLA PNEUMONIAE CULTURED FROM PATIENTS AT TEHRAN HOSPITALS DURING 2003-2004. 2005.##146. Japoni A, Alborzi A, Rasouli M, Pourabbas B. Modified DNA extraction for rapid PCR detection of methicillin-resistant Staphylococci. Iranian Biomedical Journal. 2004;8(3):161-5.##147. Meng X, Dong M, Wang D, He J, Yang C, Zhu L, et al. Antimicrobial susceptibility patterns of clinical isolates of gram-negative bacteria obtained from intensive care units in a tertiary hospital in Beijing, China. Journal of Chemotherapy. 2011;23(4):207-10.##148. Jean S-S, Teng L-J, Hsueh P-R, Ho S-W, Luh K-T. Antimicrobial susceptibilities among clinical isolates of extended-spectrum cephalosporin-resistant Gram-negative bacteria in a Taiwanese University Hospital. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2002;49(1):69-76.##149. Orrett FA. Resistance patterns among selective Gram-negative bacilli from an intensive care unit in Trinidad, West Indies. Saudi medical journal. 2004;25(4):478-83.##150. Ahmadi K, Dadgari F, Safarinejad MR. Assessing the frequency and antibiotic resistance of nosocomial bacterial infections in the intensive care units and general wards. Journal of infectious diseases and immunity. 2011;3(8):140-8.##151. Sheibani, Shahroudi BC, rare. Prevalence of common etiologic agents of community-acquired pneumonia in Iran reported in the literature review. Medical Journal of Mashhad University of Medical Sciences. 2015; 57 (9): 1002-15.##152. Clyde Jr WA. Clinical overview of typical Mycoplasma pneumoniae infections. Clinical Infectious Diseases. 1993:S32-S6.##153. Ieven M, Ursi D, Van Bever H, Quint W, Niesters H, Goossens H. Detection of Mycoplasma pneumoniae by two polymerase chain reactions and role of M. pneumoniae in acute respiratory tract infections in pediatric patients. Journal of infectious diseases. 1996;173(6):1445-52.##154. Strålin K, Korsgaard J, Olcén P. Evaluation of a multiplex PCR for bacterial pathogens applied to bronchoalveolar lavage. European Respiratory Journal. 2006;28(3):568-75.##155. Mirkalantari S, Mohabati Mobarez A, Hoseini Dost SR, Aslani J. Isolation of Legionella from BAL samples of Legionella pneumonia patients, by PCR and Culture Methods. Modares Journal of Medical Sciences: Pathobiology. 2008;10:75-83.##156. Moosavian S, Pordeli H. Survey of respiratory and urogenital infections due to Mycoplasma in the hospitalized patients in Ahwaz Imam Khomeini Hospital. Journal of Kerman University of Medical Sciences. 2003;10(4). ISSN 1023-9510 ##